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Neuropixels-Analyse

End-to-End-Analyse von Neuropixels-Extrazelluläraufzeichnungen mit SpikeInterface. Umfasst das Laden von SpikeGLX/Open Ephys/NWB-Daten, Vorverarbeitung, Drift-/Bewegungskorrektur, Kilosort4- (und CPU-)Spike-Sorting, Qualitätsmetriken sowie Unit-Kuration (schwellenbasiert, modellbasiert mit UnitRefine und KI-gestützte Überprüfung). Verwenden Sie diesen Skill bei der Arbeit mit Neuropixels-1.0/2.0-Aufzeichnungen, Spike-Sorting oder extrazellulärer Elektrophysiologie-Analyse.

Was ist Neuropixels-Analyse?

Dieser Skill bietet ein umfassendes Toolkit für die Analyse hochdichter neuronaler Aufzeichnungen von Neuropixels-Sonden unter Verwendung aktueller Best Practices aus SpikeInterface, dem Allen Institute und dem International Brain Laboratory (IBL). Der Skill deckt den gesamten Workflow ab, von rohen Binärdateien bis hin zu publikationsreifen kuratierten Einheiten (Units). Er unterstützt Formate wie SpikeGLX, Open Ephys und NWB und bietet integrierte Skripte für gängige Aufgaben wie Vorverarbeitung (Hochpassfilter, Erkennung fehlerhafter Kanäle, gemeinsame Referenz), Bewegungskorrektur, Spike-Sorting mit GPU-basiertem Kilosort4 oder CPU-Alternativen (SpykingCircus2, Tridesclous2, Mountainsort5) sowie die Berechnung von Qualitätsmetriken (Rauschabstand, Interspike-Intervall-Verletzungen, Anwesenheitsverhältnis). Für die Kuration bietet er mehrere Ansätze: manuelle Schwellenwerte, modellbasierte Klassifizierung mit UnitRefine (über Hugging Face), und KI-gestützte visuelle Überprüfung in Agenten wie Cursor oder Claude Code. Der Skill ist deterministisch und reproduzierbar konzipiert und enthält Referenzhandbücher und eine bearbeitbare Vorlage für benutzerdefinierte Pipelines.

Funktioniert mit✓Claude Code~Codex CLI✓Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/neuropixels-analysis

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Dokumentation

Analyse von Neuropixels-Daten

Überblick

Toolkit zur Analyse hochdichter neuronaler Aufzeichnungen von Neuropixels-Sonden unter Verwendung aktueller Best Practices aus SpikeInterface, dem Allen Institute und dem International Brain Laboratory (IBL). Es deckt den gesamten Workflow von rohen Daten bis zu publikationsreifen kuratierten Einheiten (Units) ab.

Alle Beispiele verwenden die echte SpikeInterface-API (spikeinterface.full as si) sowie das begleitende Kurationsmodul (spikeinterface.curation as sc). Der Skill enthält ausführbare Skripte in scripts/ und eine kopier- und bearbeitbare Vorlage in assets/, die diesen Workflow direkt auf SpikeInterface implementieren. Es gibt kein separates Paket, das über die unter Installation aufgeführten Abhängigkeiten hinaus installiert werden müsste.

Wann dieser Skill verwendet werden sollte

Dieser Skill sollte verwendet werden, wenn:

  • mit Neuropixels-Aufzeichnungen (.ap.bin, .lf.bin, .meta-Dateien) gearbeitet wird
  • Daten aus den Formaten SpikeGLX, Open Ephys oder NWB geladen werden
  • neuronale Aufzeichnungen vorverarbeitet werden (Filtern, gemeinsame Referenz, Erkennung fehlerhafter Kanäle)
  • Bewegung/Drift erkannt und korrigiert wird
  • Spike-Sorting durchgeführt wird (Kilosort4, SpykingCircus2, Mountainsort5, Tridesclous2)
  • Qualitätsmetriken berechnet werden (SNR, ISI-Verletzungen, Anwesenheitsverhältnis, Amplitudengrenzwert)
  • Units kuratiert werden (schwellenbasiert, modellbasiert oder KI-gestützt)
  • Visualisierungen erstellt und nach Phy oder NWB exportiert werden

Unterstützte Hardware und Formate

SondeElektrodenKanäleHinweise
Neuropixels 1.0960384phase_shift für ADC-Korrektur verwenden
Neuropixels 2.0 (einzeln)1280384Dichteres Gitter
Neuropixels 2.0 (4-Schäfte)5120384Mehrbereichsaufzeichnung
FormatErweiterungReader
SpikeGLX.ap.bin, .lf.bin, .metasi.read_spikeglx()
Open Ephys.continuous, .oebinsi.read_openephys()
NWB.nwbsi.read_nwb()

Schnellstart

Import und Konfiguration der Parallelverarbeitung

import spikeinterface.full as si

# Globale Job-Kwargs werden von allen parallelisierbaren Schritten wiederverwendet
si.set_global_job_kwargs(n_jobs=-1, chunk_duration="1s", progress_bar=True)

Daten laden

# Zuerst verfügbare Streams inspizieren
stream_names, stream_ids = si.get_neo_streams("spikeglx", "/pfad/zu/run_g0/")
print(stream_names)  # z.B. ['imec0.ap', 'imec0.lf', 'nidq']

# SpikeGLX (am häufigsten) — AP-Stream nach Namen auswählen
recording = si.read_spikeglx("/pfad/zu/run_g0/", stream_name="imec0.ap", load_sync_channel=False)

# Open Ephys
recording = si.read_openephys("/pfad/zu/Record_Node_101/")

# Für schnelle Iteration die ersten 60 s ausschneiden
fs = recording.get_sampling_frequency()
recording_sub = recording.frame_slice(0, int(60 * fs))

Vollständige Pipeline (gebündeltes Skript)

Das Repository enthält eine auf SpikeInterface basierende End-to-End-Pipeline:

python scripts/neuropixels_pipeline.py /pfad/zu/spikeglx/daten output/ --sorter kilosort4 --curation allen

Sie führt die Schritte Laden → Vorverarbeitung → Driftprüfung → optionale Bewegungskorrektur → Sorting → Nachverarbeitung → Qualitätsmetriken → Kuration → Export aus. Lesen Sie die folgenden Schritte, um sie interaktiv auszuführen oder die Pipeline anzupassen.

Standard-Analyse-Workflow

1. Vorverarbeitung

Empfohlene Kette, nach der SpikeInterface-Neuropixels-Anleitung (IBL-artige Destriping mit Kanalentfernung + gemeinsame Referenz):

rec = si.highpass_filter(recording, freq_min=400.0)
bad_channel_ids, channel_labels = si.detect_bad_channels(rec)
rec = rec.remove_channels(bad_channel_ids)
rec = si.phase_shift(rec)  # ADC-Phasenkorrektur (Neuropixels 1.0)
rec = si.common_reference(rec, operator="median", reference="global")

Die vorverarbeitete Aufzeichnung speichern (Kilosort benötigt eine Binärdatei, und es beschleunigt die Wiederverwendung):

rec = rec.save(folder="vorverarbeitet/", format="binary")

2. Drift prüfen und korrigieren

Vor dem Sorting immer den Drift inspizieren:

from spikeinterface.sortingcomponents.peak_detection import detect_peaks
from spikeinterface.sortingcomponents.peak_localization import localize_peaks

noise_levels = si.get_noise_levels(rec, return_in_uV=False)
peaks = detect_peaks(rec, method="locally_exclusive", noise_levels=noise_levels,
                     detect_threshold=5, radius_um=50.0)
peak_locations = localize_peaks(rec, peaks, method="center_of_mass")

# Drift-Raster visualisieren
si.plot_drift_raster_map(peaks=peaks, peak_locations=peak_locations,
                         recording=rec, clim=(-50, 50))

Bei Bedarf Korrektur anwenden (Voreinstellungen: rigid_fast, kilosort_like, nonrigid_accurate, nonrigid_fast_and_accurate, dredge, dredge_fast):

rec_corrected = si.correct_motion(rec, preset="nonrigid_fast_and_accurate", folder="bewegung/")

3. Spike-Sorting

# Kilosort4 (empfohlen, erfordert eine CUDA-GPU)
sorting = si.run_sorter("kilosort4", rec_corrected, folder="ks4_ausgabe")

# CPU-Alternativen (intern entwickelt, keine externe Installation)
sorting = si.run_sorter("spykingcircus2", rec_corrected, folder="sc2_ausgabe")
sorting = si.run_sorter("tridesclous2", rec_corrected, folder="tdc2_ausgabe")
sorting = si.run_sorter("mountainsort5", rec_corrected, folder="ms5_ausgabe")

# Externe Sorter können ohne lokale Installation in Containern ausgeführt werden
sorting = si.run_sorter("kilosort2_5", rec_corrected, folder="ks25_ausgabe", docker_image=True)

print(si.installed_sorters())

Hinweis: run_sorter verwendet das Argument folder=. Das ältere output_folder= ist veraltet.

4. Nachverarbeitung

analyzer = si.create_sorting_analyzer(sorting, rec_corrected, sparse=True,
                                      format="binary_folder", folder="analyzer/")

analyzer.compute("random_spikes", method="uniform", max_spikes_per_unit=500)
analyzer.compute("waveforms", ms_before=1.0, ms_after=2.0)
analyzer.compute("templates", operators=["average", "std"])
analyzer.compute("noise_levels")
analyzer.compute("spike_amplitudes")
analyzer.compute("correlograms", window_ms=50.0, bin_ms=1.0)
analyzer.compute("unit_locations", method="monopolar_triangulation")
analyzer.compute("template_similarity")

metric_names = ["firing_rate", "presence_ratio", "snr", "isi_violation", "amplitude_cutoff"]
analyzer.compute("quality_metrics", metric_names=metric_names)
metrics = analyzer.get_extension("quality_metrics").get_data()

5. Kuration mittels Metrikschwellenwerten

# Allen-artige Abfrage (Hinweis: Spalte heißt isi_violations_ratio)
query = "(amplitude_cutoff < 0.1) & (isi_violations_ratio < 0.5) & (presence_ratio > 0.9)"
good_unit_ids = metrics.query(query).index.values

Für wiederverwendbare, mehrschwellige Logik mit den Voreinstellungen allen / ibl / strict verwenden Sie das gebündelte scripts/compute_metrics.py. Einzelheiten und die Werkzeuge Bombcell / UnitMatch finden Sie in references/AUTOMATED_CURATION.md.

6. Modellbasierte Kuration (UnitRefine)

SpikeInterface kann vortrainierte maschinelle Lernklassifikatoren von Hugging Face über das Modul spikeinterface.curation anwenden. Die UnitRefine-Modelle wurden auf echten Neuropixels-Daten (V1, SC, ALM) trainiert:

import spikeinterface.curation as sc

# 1) Rauschen vs. neuronal
noise_labels = sc.model_based_label_units(
    sorting_analyzer=analyzer,
    repo_id="SpikeInterface/UnitRefine_noise_neural_classifier",
    trust_model=True,
)
neural = analyzer.remove_units(noise_labels[noise_labels["prediction"] == "noise"].index)

# 2) Single-Unit (sua) vs. Multi-Unit (mua) auf den verbleibenden Units
sua_mua_labels = sc.model_based_label_units(
    sorting_analyzer=neural,
    repo_id="SpikeInterface/UnitRefine_sua_mua_classifier",
    trust_model=True,
)

Jeder Aufruf gibt einen DataFrame mit prediction und probability (Konfidenz) pro Unit zurück. trust_model=True (oder eine explizite trusted=[...]-Liste) ist erforderlich, um das .skops-Modell zu laden – laden Sie nur Modelle aus Quellen, denen Sie vertrauen. Auf anderen Hirnregionen/Datensätzen trainierte Modelle übertragen sich möglicherweise nicht; validieren Sie gegen eine manuell beschriftete Teilmenge.

7. KI-gestützte Kuration (für unsichere Units)

Wenn der Skill in einem Agenten wie Cursor oder Claude Code ausgeführt wird, kann der Agent direkt Wellenform-/Korrelogramm-Plots inspizieren und eine Expertenbewertung abgeben – keine API-Einrichtung erforderlich. Erstellen Sie Plots und bitten Sie den Agenten, die Isolationsqualität zu bewerten.

Für programmatischen Zugriff auf visuelle Modelle: Lesen Sie API-Schlüssel aus der Umgebung – codieren Sie Anmeldeinformationen niemals fest in Analyses (sie gelangen in die Versionskontrolle und Protokolle):

import os
from anthropic import Anthropic

client = Anthropic(api_key=os.environ["ANTHROPIC_API_KEY"])  # setzen Sie dies in Ihrer Shell, nicht im Code

Das vollständige Muster (Rendern eines Unit-Übersichtsbildes, Erstellen des Prompts und Parsen der Antwort) finden Sie in references/AI_CURATION.md.

8. Ergebnisse exportieren

# Nur gute Units behalten, dann exportieren
analyzer_clean = analyzer.select_units(good_unit_ids, folder="analyzer_clean/", format="binary_folder")

# Phy für manuelle Überprüfung
si.export_to_phy(analyzer_clean, output_folder="phy_export/",
                 compute_pc_features=True, compute_amplitudes=True)

# Figurenbericht
si.export_report(analyzer_clean, "bericht/", format="png")

# NWB
from spikeinterface.exporters import export_to_nwb
export_to_nwb(analyzer_clean, "ausgabe.nwb")

# Metriktabelle
metrics.to_csv("qualitaetsmetriken.csv")

Häufige Fallstricke und Best Practices

  1. Drift immer vor dem Spike-Sorting überprüfen – Drift > ~10 μm verschlechtert die Qualität erheblich.
  2. phase_shift für Neuropixels 1.0 verwenden, um ADC-Abtastabweichungen zu korrigieren.
  3. Die vorverarbeitete Aufzeichnung mit rec.save(folder=...) speichern, um Neuberechnung zu vermeiden (Kilosort benötigt auch eine Binärdatei).
  4. Eine GPU für Kilosort4 verwenden – es ist viel schneller als CPU-Sorter.
  5. Unsichere Units überprüfen – automatisierte/modellbasierte Kuration ist ein Ausgangspunkt, kein Urteil.
  6. Ansätze kombinieren – Schwellenwerte für klare Fälle, Modell/KI für Grenzfälle verwenden.
  7. Schwellenwerte und Modell-Repository-IDs für die Reproduzierbarkeit dokumentieren.
  8. Für kritische Experimente nach Phy exportieren – menschliche Aufsicht ist wertvoll.

Wichtige anzupassende Parameter

Vorverarbeitung

  • freq_min: Hochpass-Grenzfrequenz (300–400 Hz typisch)
  • detect_bad_channels: gibt (bad_channel_ids, channel_labels) zurück

Bewegungskorrektur

  • preset: nonrigid_fast_and_accurate (ausgewogen), nonrigid_accurate (starker Drift), dredge (modernster Stand)

Spike-Sorting (Kilosort4)

  • batch_size: Samples pro Batch (60000 Standard)
  • nblocks: Drift-Blöcke (erhöhen für lange, driftende Aufzeichnungen)
  • Th_universal / Th_learned: Erkennungsschwellen (niedriger = mehr Spikes)

Qualitätsmetriken

  • snr: Signal-Rausch-Grenzwert (3–5 typisch)
  • isi_violations_ratio: Refraktärverletzungen (0.01–0.5)
  • presence_ratio: Aufzeichnungsabdeckung (0.5–0.95)

Gebündelte Ressourcen

scripts/explore_recording.py

Schnelle Inspektion einer Aufzeichnung (Streams, Kanäle, Dauer, fehlerhafte Kanäle):

python scripts/explore_recording.py /pfad/zu/daten

scripts/preprocess_recording.py

Automatisierte Vorverarbeitung:

python scripts/preprocess_recording.py /pfad/zu/daten --output vorverarbeitet/

scripts/run_sorting.py

Spike-Sorting ausführen:

python scripts/run_sorting.py vorverarbeitet/ --sorter kilosort4 --output sorting/

scripts/compute_metrics.py

Qualitätsmetriken berechnen und Kuration anwenden:

python scripts/compute_metrics.py sorting/ vorverarbeitet/ --output metrik/ --curation allen

scripts/export_to_phy.py

Nach Phy für manuelle Kuration exportieren:

python scripts/export_to_phy.py metrik/analyzer --output phy_export/

scripts/neuropixels_pipeline.py

Vollständige End-to-End-Pipeline (siehe Schnellstart).

assets/analysis_template.py

Vollständige, bearbeitbare Analysevorlage. Kopieren und anpassen:

cp assets/analysis_template.py meine_analyse.py
# Abschnitt PARAMETERS bearbeiten, dann ausführen
python meine_analyse.py

Detaillierte Referenzhandbücher

ThemaReferenz
Vollständiger Workflowreferences/standard_workflow.md
API-Referenz (SpikeInterface)references/api_reference.md
Plotting-Anleitungreferences/plotting_guide.md
Vorverarbeitungreferences/PREPROCESSING.md
Spike-Sortingreferences/SPIKE_SORTING.md
Bewegungskorrekturreferences/MOTION_CORRECTION.md
Qualitätsmetrikenreferences/QUALITY_METRICS.md
Automatisierte und modellbasierte Kurationreferences/AUTOMATED_CURATION.md
KI-gestützte Kurationreferences/AI_CURATION.md
Wellenformanalysereferences/ANALYSIS.md

Installation

Erfordert Python ≥ 3.10. Die Verwendung von uv wird empfohlen.

# Kernpakete (SpikeInterface bündelt die Kurations-/Modellwerkzeuge)
uv pip install "spikeinterface[full]" probeinterface neo

# Spike-Sorter
uv pip install kilosort          # Kilosort4 (CUDA GPU erforderlich)
uv pip install spykingcircus     # SpykingCircus (Legacy; SpykingCircus2 wird mit SpikeInterface mitgeliefert)
uv pip install mountainsort5     # Mountainsort5 (CPU)

# Modellbasierte Kuration (UnitRefine) lädt von Hugging Face herunter
uv pip install "huggingface_hub" skops

# Optional: KI-gestützte visuelle Kuration
uv pip install anthropic

# Optional: IBL-Werkzeuge und Bombcell
uv pip install ibl-neuropixel ibllib bombcell

Für reproduzierbare Umgebungen Versionen festlegen (aktueller Stand Juni 2026: spikeinterface==0.104.3, kilosort==4.1.7, probeinterface==0.3.2, neo==0.14.4). Nicht festgelegte Installationen sind für schnelle Experimente in Ordnung, sollten aber in Produktionspipelines festgelegt werden.

Projektstruktur

projekt/
├── rohdaten/
│   └── aufnahme_g0/
│       └── aufnahme_g0_imec0/
│           ├── aufnahme_g0_t0.imec0.ap.bin
│           └── aufnahme_g0_t0.imec0.lf.bin
├── vorverarbeitet/
│   ├── ap.bin
│   └── ap.json
├── bewegung/
├── ks4_ausgabe/
├── analyzer/
├── analyzer_clean/
├── phy_export/
├── bericht/
├── metrik/
├── scripts/
├── assets/
├── referenzen/
└── README.md

Lizenz

Dieses Projekt ist unter der MIT-Lizenz lizenziert.

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

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