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análisis-neuropixels

Analiza grabaciones extracelulares de Neuropixels de principio a fin con SpikeInterface. Cubre carga de datos SpikeGLX/Open Ephys/NWB, preprocesamiento, corrección de deriva/movimiento, spike sorting con Kilosort4 (y CPU), métricas de calidad y curación de unidades (basada en umbrales, basada en modelos UnitRefine y revisión visual asistida por IA). Útil al trabajar con grabaciones Neuropixels 1.0/2.0, spike sorting o análisis electrofisiológico extracelular.

¿Qué es análisis-neuropixels?

Esta habilidad proporciona un conjunto de herramientas completo y modular para el análisis de grabaciones neuronales de alta densidad con Neuropixels. Utiliza SpikeInterface como núcleo, implementando flujos de trabajo actuales y buenas prácticas de la comunidad, incluyendo corrección de deriva, spike sorting (Kilosort4, SpykingCircus2, Mountainsort5, Tridesclous2), y curación de unidades ya sea por umbrales, modelos de machine learning (UnitRefine) o asistencia visual con IA. Está diseñada para desarrolladores y neurocientíficos que trabajan con datos de Neuropixels 1.0 y 2.0 en formatos como SpikeGLX, Open Ephys o NWB. Incluye scripts listos para ejecutar y una plantilla editable, facilitando su integración en pipelines de análisis automatizados o interactivos desde entornos como Claude Code, Cursor o Codex.

Compatible con✓Claude Code~Codex CLI✓Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/neuropixels-analysis

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Documentación

Análisis de Datos de Neuropixels

Resumen

Conjunto de herramientas para analizar grabaciones neuronales de alta densidad de Neuropixels utilizando las mejores prácticas actuales de SpikeInterface, el Allen Institute y el International Brain Laboratory (IBL). Cubre el flujo de trabajo completo desde datos brutos hasta unidades curadas listas para publicación.

Todos los ejemplos usan la API real de SpikeInterface (spikeinterface.full as si) más el módulo de curación complementario (spikeinterface.curation as sc). La habilidad incluye scripts ejecutables en scripts/ y una plantilla editable en assets/ que implementan este flujo de trabajo directamente sobre SpikeInterface; no hay un paquete separado que instalar más allá de las dependencias listadas en Instalación.

Cuándo Usar Esta Habilidad

Esta habilidad debe usarse cuando:

  • Se trabaja con grabaciones de Neuropixels (archivos .ap.bin, .lf.bin, .meta)
  • Se cargan datos de SpikeGLX, Open Ephys o formatos NWB
  • Se preprocesan grabaciones neuronales (filtrado, referencia común, detección de canales defectuosos)
  • Se detecta y corrige movimiento/deriva
  • Se ejecuta spike sorting (Kilosort4, SpykingCircus2, Mountainsort5, Tridesclous2)
  • Se calculan métricas de calidad (SNR, violaciones ISI, ratio de presencia, corte de amplitud)
  • Se curan unidades (basada en umbrales, basada en modelos o asistida por IA)
  • Se crean visualizaciones y se exporta a Phy o NWB

Hardware y Formatos Soportados

SondaElectrodosCanalesNotas
Neuropixels 1.0960384Usar phase_shift para corrección ADC
Neuropixels 2.0 (individual)1280384Geometría más densa
Neuropixels 2.0 (4 shanks)5120384Grabación multi-región
FormatoExtensiónLector
SpikeGLX.ap.bin, .lf.bin, .metasi.read_spikeglx()
Open Ephys.continuous, .oebinsi.read_openephys()
NWB.nwbsi.read_nwb()

Inicio Rápido

Importar y configurar procesamiento paralelo

import spikeinterface.full as si

# Los kwargs globales de trabajo se reutilizan en todos los pasos paralelizables
si.set_global_job_kwargs(n_jobs=-1, chunk_duration="1s", progress_bar=True)

Cargar datos

# Inspeccionar los streams disponibles primero
stream_names, stream_ids = si.get_neo_streams("spikeglx", "/ruta/al/run_g0/")
print(stream_names)  # ej. ['imec0.ap', 'imec0.lf', 'nidq']

# SpikeGLX (más común) — seleccionar el stream AP por nombre
recording = si.read_spikeglx("/ruta/al/run_g0/", stream_name="imec0.ap", load_sync_channel=False)

# Open Ephys
recording = si.read_openephys("/ruta/al/Record_Node_101/")

# Para iteración rápida, recortar los primeros 60 s
fs = recording.get_sampling_frequency()
recording_sub = recording.frame_slice(0, int(60 * fs))

Pipeline completo (script empaquetado)

El repositorio incluye un pipeline completo construido sobre SpikeInterface:

python scripts/neuropixels_pipeline.py /ruta/a/datos/spikeglx salida/ --sorter kilosort4 --curation allen

Realiza: carga → preprocesamiento → verificación de deriva → corrección de movimiento opcional → sorting → postprocesamiento → métricas de calidad → curación → exportación. Lea los pasos a continuación para ejecutarlos interactivamente o personalizar el pipeline.

Flujo de Trabajo de Análisis Estándar

1. Preprocesamiento

Cadena recomendada, siguiendo el cómo hacerlo de SpikeInterface para Neuropixels (eliminación de bandas estilo IBL con eliminación de canales + referencia común):

rec = si.highpass_filter(recording, freq_min=400.0)
bad_channel_ids, channel_labels = si.detect_bad_channels(rec)
rec = rec.remove_channels(bad_channel_ids)
rec = si.phase_shift(rec)  # Corrección de fase ADC (Neuropixels 1.0)
rec = si.common_reference(rec, operator="median", reference="global")

Guardar la grabación preprocesada (Kilosort necesita un archivo binario, y acelera la reutilización):

rec = rec.save(folder="preprocessed/", format="binary")

2. Verificar y corregir deriva

Inspeccionar siempre la deriva antes del sorting:

from spikeinterface.sortingcomponents.peak_detection import detect_peaks
from spikeinterface.sortingcomponents.peak_localization import localize_peaks

noise_levels = si.get_noise_levels(rec, return_in_uV=False)
peaks = detect_peaks(rec, method="locally_exclusive", noise_levels=noise_levels,
                     detect_threshold=5, radius_um=50.0)
peak_locations = localize_peaks(rec, peaks, method="center_of_mass")

# Visualizar el raster de deriva
si.plot_drift_raster_map(peaks=peaks, peak_locations=peak_locations,
                         recording=rec, clim=(-50, 50))

Aplicar corrección si es necesario (preajustes: rigid_fast, kilosort_like, nonrigid_accurate, nonrigid_fast_and_accurate, dredge, dredge_fast):

rec_corrected = si.correct_motion(rec, preset="nonrigid_fast_and_accurate", folder="motion/")

3. Spike sorting

# Kilosort4 (recomendado, requiere GPU CUDA)
sorting = si.run_sorter("kilosort4", rec_corrected, folder="ks4_output")

# Alternativas para CPU (desarrolladas internamente, sin instalación externa)
sorting = si.run_sorter("spykingcircus2", rec_corrected, folder="sc2_output")
sorting = si.run_sorter("tridesclous2", rec_corrected, folder="tdc2_output")
sorting = si.run_sorter("mountainsort5", rec_corrected, folder="ms5_output")

# Sorters externos pueden ejecutarse en contenedores sin instalación local
sorting = si.run_sorter("kilosort2_5", rec_corrected, folder="ks25_output", docker_image=True)

print(si.installed_sorters())

Nota: run_sorter usa el argumento folder=. El antiguo output_folder= está obsoleto.

4. Postprocesamiento

analyzer = si.create_sorting_analyzer(sorting, rec_corrected, sparse=True,
                                      format="binary_folder", folder="analyzer/")

analyzer.compute("random_spikes", method="uniform", max_spikes_per_unit=500)
analyzer.compute("waveforms", ms_before=1.0, ms_after=2.0)
analyzer.compute("templates", operators=["average", "std"])
analyzer.compute("noise_levels")
analyzer.compute("spike_amplitudes")
analyzer.compute("correlograms", window_ms=50.0, bin_ms=1.0)
analyzer.compute("unit_locations", method="monopolar_triangulation")
analyzer.compute("template_similarity")

metric_names = ["firing_rate", "presence_ratio", "snr", "isi_violation", "amplitude_cutoff"]
analyzer.compute("quality_metrics", metric_names=metric_names)
metrics = analyzer.get_extension("quality_metrics").get_data()

5. Curación por umbrales de métricas

# Consulta estilo Allen (nota: la columna es isi_violations_ratio)
query = "(amplitude_cutoff < 0.1) & (isi_violations_ratio < 0.5) & (presence_ratio > 0.9)"
good_unit_ids = metrics.query(query).index.values

Para lógica reutilizable de múltiples umbrales con preajustes allen / ibl / strict, use el script scripts/compute_metrics.py incluido. Ver references/AUTOMATED_CURATION.md para detalles y las herramientas Bombcell / UnitMatch.

6. Curación basada en modelos (UnitRefine)

SpikeInterface puede aplicar clasificadores de machine learning preentrenados de Hugging Face a través del módulo spikeinterface.curation. Los modelos UnitRefine fueron entrenados con datos reales de Neuropixels (V1, SC, ALM):

import spikeinterface.curation as sc

# 1) ruido vs neural
noise_labels = sc.model_based_label_units(
    sorting_analyzer=analyzer,
    repo_id="SpikeInterface/UnitRefine_noise_neural_classifier",
    trust_model=True,
)
neural = analyzer.remove_units(noise_labels[noise_labels["prediction"] == "noise"].index)

# 2) unidad única (sua) vs multiunidad (mua) en las unidades supervivientes
sua_mua_labels = sc.model_based_label_units(
    sorting_analyzer=neural,
    repo_id="SpikeInterface/UnitRefine_sua_mua_classifier",
    trust_model=True,
)

Cada llamada devuelve un DataFrame con prediction y probability (confianza) por unidad. trust_model=True (o una lista explícita trusted=[...]) es necesario para cargar el modelo .skops — cargue solo modelos de fuentes de confianza. Los modelos entrenados en otras áreas cerebrales/conjuntos de datos pueden no transferirse; valide contra un subconjunto etiquetado manualmente.

7. Curación asistida por IA (para unidades inciertas)

Cuando se ejecuta dentro de un agente como Cursor o Claude Code, el agente puede inspeccionar directamente los gráficos de forma de onda/correlograma y dar una lectura experta, sin necesidad de configuración de API. Genere gráficos y pida al agente que evalúe la calidad del aislamiento.

Para acceso programático a modelos de visión, lea las claves API del entorno — nunca codifique credenciales en scripts de análisis (se filtran al control de versiones y registros):

import os
from anthropic import Anthropic

client = Anthropic(api_key=os.environ["ANTHROPIC_API_KEY"])  # configure esto en su shell, no en el código

Ver references/AI_CURATION.md para el patrón completo (renderizar una imagen resumen de la unidad, construir el prompt y analizar la respuesta).

8. Exportar resultados

# Mantener solo unidades buenas, luego exportar
analyzer_clean = analyzer.select_units(good_unit_ids, folder="analyzer_clean/", format="binary_folder")

# Phy para revisión manual
si.export_to_phy(analyzer_clean, output_folder="phy_export/",
                 compute_pc_features=True, compute_amplitudes=True)

# Informe de figuras
si.export_report(analyzer_clean, "report/", format="png")

# NWB
from spikeinterface.exporters import export_to_nwb
export_to_nwb(analyzer_clean, "output.nwb")

# Tabla de métricas
metrics.to_csv("quality_metrics.csv")

Errores Comunes y Buenas Prácticas

  1. Siempre verifique la deriva antes del spike sorting — una deriva > ~10 μm degrada significativamente la calidad.
  2. Use phase_shift para Neuropixels 1.0 para corregir desviaciones de muestreo ADC.
  3. Guarde la grabación preprocesada con rec.save(folder=...) para evitar recálculos (Kilosort también necesita un archivo binario).
  4. Use una GPU para Kilosort4 — es mucho más rápido que los sorters de CPU.
  5. Revise las unidades inciertas — la curación automatizada/basada en modelos es un punto de partida, no un veredicto.
  6. Combine enfoques — umbrales para casos claros, modelo/IA para unidades límite.
  7. Documente umbrales e IDs de repositorio de modelos para reproducibilidad.
  8. Exporte a Phy para experimentos críticos — la supervisión humana es valiosa.

Parámetros Clave a Ajustar

Preprocesamiento

  • freq_min: frecuencia de corte del filtro pasa altas (300–400 Hz típico)
  • detect_bad_channels: devuelve (bad_channel_ids, channel_labels)

Corrección de Movimiento

  • preset: nonrigid_fast_and_accurate (equilibrado), nonrigid_accurate (deriva severa), dredge (estado del arte)

Spike Sorting (Kilosort4)

  • batch_size: muestras por lote (60000 por defecto)
  • nblocks: bloques de deriva (aumentar para grabaciones largas y con deriva)
  • Th_universal / Th_learned: umbrales de detección (más bajo = más spikes)

Métricas de Calidad

  • snr: umbral de relación señal-ruido (3–5 típico)
  • isi_violations_ratio: violaciones refractarias (0.01–0.5)
  • presence_ratio: cobertura de grabación (0.5–0.95)

Recursos Incluidos

scripts/explore_recording.py

Inspección rápida de una grabación (streams, canales, duración, canales defectuosos):

python scripts/explore_recording.py /ruta/a/datos

scripts/preprocess_recording.py

Preprocesamiento automatizado:

python scripts/preprocess_recording.py /ruta/a/datos --output preprocessed/

scripts/run_sorting.py

Ejecutar spike sorting:

python scripts/run_sorting.py preprocessed/ --sorter kilosort4 --output sorting/

scripts/compute_metrics.py

Calcular métricas de calidad y aplicar curación:

python scripts/compute_metrics.py sorting/ preprocessed/ --output metrics/ --curation allen

scripts/export_to_phy.py

Exportar a Phy para curación manual:

python scripts/export_to_phy.py metrics/analyzer --output phy_export/

scripts/neuropixels_pipeline.py

Pipeline completo de principio a fin (ver Inicio Rápido).

assets/analysis_template.py

Plantilla de análisis completa y editable. Copie y personalice:

cp assets/analysis_template.py my_analysis.py
# Edite la sección PARÁMETROS, luego ejecute
python my_analysis.py

Guías de Referencia Detalladas

TemaReferencia
Flujo de trabajo completoreferences/standard_workflow.md
Referencia de API (SpikeInterface)references/api_reference.md
Guía de gráficosreferences/plotting_guide.md
Preprocesamientoreferences/PREPROCESSING.md
Spike sortingreferences/SPIKE_SORTING.md
Corrección de movimientoreferences/MOTION_CORRECTION.md
Métricas de calidadreferences/QUALITY_METRICS.md
Curación automatizada y basada en modelosreferences/AUTOMATED_CURATION.md
Curación asistida por IAreferences/AI_CURATION.md
Análisis de formas de ondareferences/ANALYSIS.md

Instalación

Requiere Python ≥ 3.10. Se recomienda usar uv.

# Paquetes principales (SpikeInterface incluye las herramientas de curación/modelos)
uv pip install "spikeinterface[full]" probeinterface neo

# Spike sorters
uv pip install kilosort          # Kilosort4 (requiere GPU CUDA)
uv pip install spykingcircus     # SpykingCircus (heredado; SpykingCircus2 viene con SpikeInterface)
uv pip install mountainsort5     # Mountainsort5 (CPU)

# Curación basada en modelos (UnitRefine) descarga desde Hugging Face
uv pip install "huggingface_hub" skops

# Opcional: curación visual asistida por IA
uv pip install anthropic

# Opcional: herramientas IBL y Bombcell
uv pip install ibl-neuropixel ibllib bombcell

Para entornos reproducibles, fije las versiones (actuales a fecha de 2026-06: spikeinterface==0.104.3, kilosort==4.1.7, probeinterface==0.3.2, neo==0.14.4). Las instalaciones sin fijar están bien para experimentación rápida pero deben fijarse en pipelines de producción.

Estructura del Proyecto

project/
├── raw_data/
│   └── recording_g0/
│       └── recording_g0_imec0/
│           ├── recording_g0_t0.imec0.ap.bin
│           └── recording_g0_t0.imec0.lf.bin
├── preprocessed/
├── motion/
├── ks4_output/
├── analyzer/
├── analyzer_clean/
├── phy_export/
├── report/
├── scripts/
│   ├── neuropixels_pipeline.py
│   ├── explore_recording.py
│   ├── preprocess_recording.py
│   ├── run_sorting.py
│   ├── compute_metrics.py
│   └── export_to_phy.py
├── assets/
│   └── analysis_template.py
├── references/
│   └── (archivos .md de referencia)
└── quality_metrics.csv

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

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