Communitygithub.com

deepspot-m

Erzeuge transkriptomweite, virtuelle räumliche Transkriptomdaten aus H&E-Histologie mit DeepSpot-M. Verwende es, wenn du räumliche Genexpression in log1p-CPM für 224×224-Kacheln bei etwa 20-facher Vergrößerung benötigst, Proteinkodierungsgene per Symbol statt eines festen Panels abfragen oder eine Vorhersage über einen gesamten Objektträger nach dem Kacheln mit histolab durchführen möchtest.

Was ist deepspot-m?

DeepSpot-M ist ein multimodales Foundation-Modell, das eine 224×224 große H&E-Histologiekachel in räumliche Genexpression in log1p-CPM umwandelt und so eine virtuelle räumliche Transkriptomik ermöglicht: Ein Wert pro abgefragtem Gen pro Kachel, angeordnet auf dem Raster der Kacheln. Ein LoRA-angepasster Pathologie-Backbone (Midnight) tokenisiert die Kachel; ein Cross-Attention-Gen-Decoder erlaubt jedem Gen, auf die Patch-Token zu achten, und ein Gen-Router-Hypernetzwerk erstellt genspezifische Projektionen aus eingefrorenen biologischen Embeddings (Evo 2, Orthrus, ProtT5, scGPT, Apertus). Gene werden als abfragbare Embeddings modelliert, nicht als feste Ausgabeschlitze, sodass das veröffentlichte Modell ein Panel von ~19k Proteinkodierungsgenen abdeckt, einschließlich in Training ungesehener Gene. Auf TCGA angewandt, erzeugte das Modell einen virtuellen räumlichen Transkriptom-Atlas von 28.664 Objektträgern über 32 Krebsarten hinweg.

Funktioniert mit~Claude Code~Codex CLI~Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/deepspot-m

In Ihrer bevorzugten KI fragen

Öffnet einen neuen Chat, in dem dieser Agent-Skill bereits geladen ist.

Dokumentation

Was macht deepspot-m?

Übersicht

DeepSpot-M ist ein multimodales Foundation-Modell, das eine 224×224 große H&E-Histologiekachel in räumliche Genexpression in log1p-CPM abbildet. Die Ausgabe ist eine virtuelle räumliche Transkriptomik: ein Wert pro abgefragtem Gen pro Kachel, angeordnet auf dem Raster, aus dem die Kacheln stammen.

Ein LoRA-angepasster Pathologie-Foundation-Backbone (Midnight) tokenisiert die Kachel. Ein Cross-Attention-Gen-Decoder ermöglicht es jedem Gen-Query, auf die Patch-Token zu achten, und ein Gen-Router-Hypernetzwerk erstellt genspezifische Projektionen aus eingefrorenen biologischen Embeddings (Evo 2, Orthrus, ProtT5, scGPT, Apertus). Gene werden als abfragbare Embeddings in das Modell eingegeben, nicht als feste Ausgabeschlitze, sodass das veröffentlichte Modell ein Panel von etwa 19k Proteinkodierungsgenen abdeckt, einschließlich Genen, die im Training nicht gesehen wurden. Das Panel wird mit den Gewichten als tokens.csv ausgeliefert und ist als model.gene_names verfügbar; Gene außerhalb können in dieser Version nicht abgefragt werden.

Angewandt auf TCGA erzeugte das Modell einen virtuellen räumlichen Transkriptom-Atlas von 28.664 Objektträgern über 32 Krebsarten hinweg.

Lizenzierung

Der Code steht unter der PolyForm Noncommercial 1.0.0-Lizenz und die Gewichte unter CC-BY-NC-SA-4.0. Verwende es für nichtkommerzielle Forschung und überprüfe beide Lizenzen, bevor du Ergebnisse weiterverteilst.

Installation

uv pip install deepspotm==1.0.0

Version 1.0.0 zielt auf Python 3.10 bis 3.13 ab und bezieht PyTorch mit ein. Installiere zuerst den PyTorch-Build, der zu deiner CUDA-Version passt, wenn du GPU-Inferenz verwenden möchtest.

Modellzugriff

Die Gewichte sind zugangsbeschränkt:

  1. Öffne https://huggingface.co/ratschlab/DeepSpotM und beantrage Zugriff.
  2. Sobald der Zugriff gewährt wurde, authentifiziere den Rechner, der die Gewichte herunterladen wird:
huggingface-cli login

from_pretrained liest dieses zwischengespeicherte Token, daher ist ein Login einmal pro Rechner erforderlich.

Schnellstart

from deepspotm import DeepSpotM

model, image_processor = DeepSpotM.from_pretrained("ratschlab/DeepSpotM", source="scgpt")

vals = model.predict_genes(image_processor(pil_tile).unsqueeze(0), ["EPCAM", "CD3D"])

pil_tile ist ein PIL-Bild mit exakt 224×224 Pixeln. image_processor wandelt es in einen Tensor um, unsqueeze(0) fügt die Batch-Dimension hinzu, und predict_genes nimmt den Batch sowie eine Liste von HGNC-Gensymbolen entgegen. Die Werte werden in log1p-CPM zurückgegeben, ausgerichtet an der übergebenen Genliste, also behalte diese Liste neben der Ausgabe, um die Spalten beschriftet zu halten. Symbole müssen im veröffentlichten Panel von etwa 19k Genen (model.gene_names) enthalten sein; ein unbekanntes Symbol löst einen KeyError mit Nennung der fehlerhaften Gene aus.

Kachelanforderungen

Kacheln müssen 224×224 RGB bei etwa 20-facher Vergrößerung (etwa 0,5 Mikrometer pro Pixel) sein. Überprüfe die Größe an der Grenze deiner Pipeline, anstatt einen ungeprüften Ausschnitt durchzureichen:

TILE_PX = 224

def require_tile(tile):
    """Gib eine RGB 224×224-Kachel zurück oder löse einen Fehler aus, wenn der Ausschnitt die falsche Größe hat."""
    if tile.size != (TILE_PX, TILE_PX):
        raise ValueError(
            f"DeepSpot-M erwartet eine {TILE_PX}x{TILE_PX}-Kachel bei etwa 20x "
            f"(~0,5 Mikrometer pro Pixel); erhalten: {tile.size[0]}x{tile.size[1]}. "
            "Neu kacheln auf der passenden Ebene oder den Ausschnitt neu abtasten."
        )
    return tile.convert("RGB")

Extrahiere Kacheln auf der Objektträgerebene, deren Auflösung am nächsten bei 0,5 Mikrometern pro Pixel liegt, und schneide sie dort auf 224×224 zu. Eine Neuabtastung von einer gröberen Ebene verändert die Textur, die der Backbone liest.

Abhängigkeit optional halten

deepspotm und seine Gewichte sind eine schwere, zugangsbeschränkte Abhängigkeit. Importiere es innerhalb der Funktion, die es benötigt, damit das umgebende Projekt ohne es installiert, importiert und getestet werden kann, und verwandle einen ImportError in eine Nachricht, die jeden Schritt benennt:

DEEPSPOTM_HELP = (
    "DeepSpot-M ist nicht verfügbar. Installiere es mit `uv pip install deepspotm==1.0.0`, beantrage "
    "Zugriff auf die zugangsbeschränkten Gewichte unter https://huggingface.co/ratschlab/DeepSpotM, und "
    "authentifiziere dich mit `huggingface-cli login`."
)

def load_deepspotm(source="scgpt"):
    try:
        from deepspotm import DeepSpotM
    except ImportError as exc:
        raise RuntimeError(DEEPSPOTM_HELP) from exc
    return DeepSpotM.from_pretrained("ratschlab/DeepSpotM", source=source)

Embedding-Quellen

source wählt aus, aus welchem eingefrorenen Gen-Embedding der Router Projektionen erstellt. Es ist einer von fünf Werten:

sourceGen-Embedding
evo2Genomische Sequenz
orthrusRNA
prott5Proteinsequenz
scgptEinzelzell-Expression
apertusSprachmodell

Jede bietet eine andere Sicht auf die Genidentität. Wähle eine pro Durchlauf und führe dieselben Kacheln durch mehr als eine Quelle, wenn die Wahl für deine Analyse wichtig ist. Siehe references/api.md für die vollständige Aufruffläche, Batch-Verarbeitung und Geräteplatzierung, Behandlung von Gensymbolen und Ausgabeeinheiten.

Arbeitsablauf für ganze Objektträger

Die Vorhersage erfolgt pro Kachel, daher ist ein objektträgerweiter Durchlauf ein Kachelschritt gefolgt von batchweiser Inferenz:

  1. Extrahiere 224×224-Kacheln auf einem Raster mit dem histolab-Skill und behalte die Koordinaten jeder Kachel.
  2. Verarbeite und staple Kacheln mit torch.stack in Batches.
  3. Rufe predict_genes einmal pro Batch mit derselben Genliste auf.
  4. Verkette die Batches zu einer Kacheln-mal-Gene-Matrix und füge die Koordinaten hinzu.

Diese Matrix ist die virtuelle räumliche Transkriptom-Karte für den Objektträger und kann direkt in AnnData für nachgelagerte räumliche Analysen eingefügt werden. references/whole_slide.md enthält eine ausgearbeitete Schleife, Batch-Größenbestimmung und einen AnnData-Assemblierungsschritt.

Häufige Anwendungsfälle

  • Räumliche Expressionskarten für Markergene über einen Tumorschnitt hinweg.
  • Transkriptomweite Vorhersage über eine Objektträgerkohorte ohne passenden Assay-Durchlauf.
  • Abfrage eines der etwa 19k Panel-Gene per Symbol, einschließlich in Training ungesehener Gene – weit über die wenigen hundert Gene eines typischen räumlichen Assay-Panels hinaus.
  • Hinzufügen eines Expressionskanals zu einer rein morphologischen Histologie-Pipeline.
  • Erstellung eines objektträgerweiten Kohorten-Atlasses, wie für TCGA durchgeführt.

Detaillierte Referenzen

  • references/api.md: from_pretrained und predict_genes im Detail, die fünf Embedding-Quellen und wie man sie auswählt, Batch-Verarbeitung, Geräteplatzierung, Behandlung von Gensymbolen und Umrechnung der log1p-CPM-Ausgabe.
  • references/whole_slide.md: Kacheln mit histolab, eine objektträgerweite Vorhersageschleife, Zusammenstellung und Speicherung einer Kacheln-mal-Gene-Matrix sowie kohortenweite Durchläufe.

Primärquellen

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

Verwandte Skills