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deepspot-m

Genera transcriptómica espacial virtual a partir de histología H&E con DeepSpot-M. Úsalo cuando necesites expresión génica espacial en log1p-CPM para tiles de 224x224 a aproximadamente 20x, quieras consultar genes codificantes de proteínas por símbolo en lugar de un panel fijo, o desees ejecutar predicción en un portaobjetos completo después de realizar tileado con histolab.

¿Qué es deepspot-m?

DeepSpot-M es un modelo fundacional multimodal que mapea un tile de histología H&E de 224x224 píxeles a expresión génica espacial en unidades log1p-CPM. El resultado es transcriptómica espacial virtual: un valor por gen consultado por tile, dispuesto en la cuadrícula de origen de los tiles. Utiliza una espina dorsal de patología de base adaptada con LoRA (Midnight) para tokenizar el tile, un decodificador de genes con atención cruzada que permite que cada consulta de gen atienda a los tokens del parche, y una hiperred de enrutamiento de genes que construye proyecciones específicas para cada gen a partir de incrustaciones biológicas congeladas (Evo 2, Orthrus, ProtT5, scGPT, Apertus). Los genes ingresan al modelo como incrustaciones consultables en lugar de ranuras de salida fijas, por lo que el modelo lanzado cubre un panel de ~19,000 genes codificantes de proteínas, incluidos genes no vistos en el entrenamiento. Aplicado a TCGA, el modelo produjo un atlas de transcriptómica espacial virtual de 28,664 portaobjetos en 32 tipos de cáncer. El código tiene licencia PolyForm Noncommercial 1.0.0 y los pesos tienen licencia CC-BY-NC-SA-4.0, por lo que su uso está destinado a investigación no comercial y es necesario solicitar acceso a los pesos.

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Documentación

¿Qué hace deepspot-m?

Resumen

DeepSpot-M es un modelo fundacional multimodal que mapea un tile de histología H&E de 224x224 píxeles a expresión génica espacial en log1p-CPM. La salida es transcriptómica espacial virtual: un valor por gen consultado por tile, dispuesto en la cuadrícula de la que provienen los tiles.

Una espina dorsal de patología de base adaptada con LoRA (Midnight) tokeniza el tile. Un decodificador de genes con atención cruzada permite que cada consulta de gen atienda a los tokens del parche, y una hiperred de enrutamiento de genes construye proyecciones específicas para cada gen a partir de incrustaciones biológicas congeladas (Evo 2, Orthrus, ProtT5, scGPT, Apertus). Los genes ingresan al modelo como incrustaciones consultables en lugar de ranuras de salida fijas, por lo que el modelo lanzado cubre un panel de ~19,000 genes codificantes de proteínas, incluidos genes no vistos en el entrenamiento. El panel se distribuye con los pesos como tokens.csv y se expone como model.gene_names; los genes fuera de este panel no se pueden consultar en esta versión.

Aplicado a TCGA, el modelo produjo un atlas de transcriptómica espacial virtual de 28,664 portaobjetos en 32 tipos de cáncer.

Licencia

El código tiene licencia PolyForm Noncommercial 1.0.0 y los pesos tienen licencia CC-BY-NC-SA-4.0. Úsalo para investigación no comercial y verifica ambas licencias antes de redistribuir resultados.

Instalación

uv pip install deepspotm==1.0.0

La versión 1.0.0 está dirigida a Python 3.10 a 3.13 e incluye PyTorch. Instala primero la compilación de PyTorch que coincida con tu versión de CUDA si deseas inferencia en GPU.

Acceso al modelo

Los pesos están restringidos:

  1. Abre https://huggingface.co/ratschlab/DeepSpotM y solicita acceso.
  2. Una vez que se conceda el acceso, autentica la máquina que los descargará:
huggingface-cli login

from_pretrained lee ese token en caché, por lo que se necesita un inicio de sesión una vez por máquina.

Inicio rápido

from deepspotm import DeepSpotM

model, image_processor = DeepSpotM.from_pretrained("ratschlab/DeepSpotM", source="scgpt")

vals = model.predict_genes(image_processor(pil_tile).unsqueeze(0), ["EPCAM", "CD3D"])

pil_tile es una imagen PIL de exactamente 224x224 píxeles. image_processor la convierte en un tensor, unsqueeze(0) agrega la dimensión del lote, y predict_genes toma el lote más una lista de símbolos de genes HGNC. Los valores se devuelven en log1p-CPM, alineados con la lista de genes que proporcionaste, así que mantén esa lista junto con la salida para mantener las columnas etiquetadas. Los símbolos deben estar en el panel de ~19,000 genes publicado (model.gene_names); un símbolo desconocido lanza KeyError nombrando los genes infractores.

Requisitos de los tiles

Los tiles deben ser RGB de 224x224 a aproximadamente 20x de aumento (alrededor de 0.5 micras por píxel). Verifica el tamaño en el límite de tu pipeline en lugar de pasar un recorte sin verificar:

TILE_PX = 224

def require_tile(tile):
    """Devuelve un tile RGB de 224x224, o lanza una excepción si el recorte es del tamaño incorrecto."""
    if tile.size != (TILE_PX, TILE_PX):
        raise ValueError(
            f"DeepSpot-M espera un tile de {TILE_PX}x{TILE_PX} a aproximadamente 20x "
            f"(~0.5 micras por píxel); se obtuvo {tile.size[0]}x{tile.size[1]}. "
            "Vuelve a hacer tileado en el nivel coincidente o remuestrea el recorte."
        )
    return tile.convert("RGB")

Extrae tiles en el nivel del portaobjetos cuya resolución sea la más cercana a 0.5 micras por píxel, luego recorta a 224x224 en ese nivel. Remuestrear desde un nivel más grueso cambia la textura que lee la espina dorsal.

Mantén la dependencia opcional

deepspotm y sus pesos son una dependencia pesada y restringida. Impórtala dentro de la función que la necesite para que el proyecto circundante se instale, importe y pruebe sin ella, y convierte un ImportError en un mensaje que nombre cada paso:

DEEPSPOTM_HELP = (
    "DeepSpot-M no está disponible. Instálalo con `uv pip install deepspotm==1.0.0`, solicita "
    "acceso a los pesos restringidos en https://huggingface.co/ratschlab/DeepSpotM, luego "
    "autentícate con `huggingface-cli login`."
)

def load_deepspotm(source="scgpt"):
    try:
        from deepspotm import DeepSpotM
    except ImportError as exc:
        raise RuntimeError(DEEPSPOTM_HELP) from exc
    return DeepSpotM.from_pretrained("ratschlab/DeepSpotM", source=source)

Fuentes de incrustación

source selecciona qué incrustación de genes congelada utiliza el enrutador para construir proyecciones. Es uno de cinco valores:

sourceIncrustación de genes
evo2secuencia genómica
orthrusARN
prott5secuencia de proteínas
scgptexpresión unicelular
apertusmodelo de lenguaje

Cada una proporciona una vista diferente de la identidad del gen. Elige una por ejecución y ejecuta los mismos tiles a través de más de una fuente cuando la elección sea relevante para tu análisis. Consulta references/api.md para conocer la superficie de llamadas completa, el agrupamiento en lotes y la colocación en dispositivos, el manejo de símbolos de genes y las unidades de salida.

Flujo de trabajo para portaobjetos completos

La predicción se realiza por tile, por lo que una ejecución a nivel de portaobjetos es un paso de tileado seguido de inferencia por lotes:

  1. Extrae tiles de 224x224 en una cuadrícula con la skill histolab, manteniendo las coordenadas de cada tile.
  2. Procesa y apila los tiles en lotes con torch.stack.
  3. Llama a predict_genes una vez por lote con la misma lista de genes.
  4. Concatena los lotes en una matriz de tiles por genes y adjunta las coordenadas.

Esa matriz es el mapa de transcriptómica espacial virtual para el portaobjetos, y se integra directamente en AnnData para análisis espacial posteriores. references/whole_slide.md tiene un bucle de trabajo, tamaño de lote y un paso de ensamblaje de AnnData.

Casos de uso comunes

  • Mapas de expresión espacial para genes marcadores en una sección tumoral.
  • Predicción en todo el transcriptoma sobre una cohorte de portaobjetos sin un ensayo de ensayo coincidente.
  • Consulta de cualquiera de los ~19,000 genes del panel por símbolo, incluidos genes no vistos en el entrenamiento, mucho más allá de los pocos cientos de genes de un panel de ensayo espacial típico.
  • Agregar un canal de expresión a un pipeline de histología basado solo en morfología.
  • Construir un atlas de cohorte a nivel de portaobjetos, como se hizo para TCGA.

Referencias detalladas

  • references/api.md: from_pretrained y predict_genes en detalle, las cinco fuentes de incrustación y cómo elegir, agrupamiento por lotes, colocación en dispositivos, manejo de símbolos de genes y conversión de salida log1p-CPM.
  • references/whole_slide.md: tileado con histolab, un bucle de predicción a escala de portaobjetos, ensamblaje y almacenamiento de una matriz de tiles por genes, y ejecuciones a escala de cohorte.

Fuentes primarias

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

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