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OneKGPd

Dieses Skill ermöglicht individuenbasierte Abfragen des 1000-Genome-Projekts – ein Werkzeug, um Varianten und Träger in der erweiterten Hochabdeckungskohorte von 3.202 vollständig genomsequenzierten Individuen zu identifizieren.

Was ist OneKGPd?

OneKGPd ist ein leistungsstarkes Skill für KI-Agenten, das die umfassende Datenbank des 1000-Genome-Projekts (3.202 Individuen, GRCh38-Assemblierung) erschließt. Es ermöglicht zwei komplementäre Abfrageklassen: die Auswahl von **Varianten** in einer genomischen Region (kohortenweit oder in einer bestimmten Personengruppe) sowie die Identifikation der **Individuen**, die bestimmte Varianten tragen. Die Auswahl kann anhand zahlreicher Kriterien gefiltert werden: Allelfrequenz (1000 Genomes, gnomAD 4.1), vorhergesagte Konsequenz, klinische Signifikanz (ClinVar), AlphaMissense-Klassifikation, VEP- Annotationen und mehr. Auch der Verwandtschaftsgrad zwischen zwei Individuen sowie die Anzahl homozygoter Referenzträger an einer einzelnen Position können abgefragt werden. Das Skill setzt auf die Skripte `onekgpd_api.py` und `onekgpd_meta.py`, die über die Befehlszeile mit `uv run` ausgeführt werden. Eine zwingende Voraussetzung ist die vorherige Auflösung von Koordinaten (z. B. Gen-Symbol zu GRCh38-Positionen) anhand einer autoritativen Quelle, da die Datenbank keine Schutzmechanismen gegen falsche Koordinaten bietet. Das Skill ist plattformunabhängig und benötigt keine API-Keys oder Anmeldedaten – es eignet sich ideal für genomische Recherchen, populationsgenetische Analysen und medizinische Genetik in KI-gestützten Workflows.

Funktioniert mit~Claude Code~Codex CLI~Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/onekgpd

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Dokumentation

OneKGPd: Individuenbasierte Abfragen des 1000-Genome-Projekts

Umfang

Dieses Skill durchsucht den Datensatz des 1000-Genome-Projekts – die erweiterte Hochabdeckungskohorte von 3.202 vollständig genomsequenzierten Individuen, basierend auf der GRCh38-Assemblierung. Alle Ergebnisse stammen aus dieser Kohorte, und die vom Skill zurückgegebenen Probennamen (z. B. HG00096 oder NA21130) identifizieren deren Teilnehmer.

Abfragen werden gegen die genotypischen Daten jedes Individuums der Kohorte aufgelöst. Dies unterstützt zwei komplementäre Frageklassen: die Auswahl von Varianten, die in einer Region getragen werden (kohortenweit oder in einer bestimmten Gruppe von Individuen), sowie die Auswahl der Individuen, die Varianten mit bestimmten Kriterien tragen. Die Variantenauswahl kann nach Allelfrequenz, vorhergesagter Konsequenz, klinischer Signifikanz, AlphaMissense-Klassifikation und den unten aufgeführten anderen Annotationen gefiltert werden. Auch die Verwandtschaft zwischen zwei benannten Individuen ist verfügbar.

Der Genotyp-Status, in dem eine Variante getragen wird – heterozygot oder homozygot – ist ein Kriterium, das Abfragen angeben können; Ergebnisse werden als Varianten oder als Probennamen zurückgegeben, nicht als rohe Genotypen.

Verwendung

Verwenden Sie dieses Skill, wenn Sie:

  • Varianten finden möchten, die in einer Region oder mehreren Regionen getragen werden und bestimmte Kriterien in der gesamten Kohorte erfüllen (select-variants).
  • Varianten finden möchten, die in einer Region oder mehreren Regionen getragen werden und bestimmte Kriterien in einer bestimmten Gruppe von Individuen erfüllen (select-variants-in-samples).
  • Herausfinden möchten, welche 1000-Genome-Individuen Varianten tragen, die bestimmte Kriterien in einer Region oder mehreren Regionen erfüllen (select-samples).
  • Zählen möchten, wie viele Individuen bestimmte Varianten tragen (count-samples).
  • Jede Variantenabfrage auf heterozygote oder homozygote Träger beschränken möchten, oder beide zusammen abfragen möchten (Standard).
  • Identifizieren möchten, welche Individuen an einer einzelnen Position homozygot für die Referenz sind (select-samples-hom-ref).
  • Die Verwandtschaft zwischen zwei benannten 1000-Genome-Individuen bestimmen möchten – sowohl den Grad (Zwilling / 1. / 2. / 3. Grad / nicht verwandt) als auch den KING-Verwandtschaftskoeffizienten (kinship).
  • Gesamtzahlen des Datensatzes erhalten möchten – Anzahl der Proben, Geschlechterverteilung, Variantenanzahl, Assemblierung (dataset-info).
  • Die Variantenauswahl kann nach KGP-Allelfrequenz, gnomAD 4.1 Exom- und gnomAD 4.1 Genom-Allelfrequenz, AlphaMissense-Score und AlphaMissense-Klasse, ClinVar-Signifikanz (202502) und VEP-Annotationen (Auswirkung, Biotyp, Feature-Typ, Variantenklasse, Konsequenzen) spezifiziert werden.

Verwenden Sie dieses Skill NICHT für:

  • Die Auflösung eines Gensymbols, einer rsID oder eines Transkripts in Koordinaten, oder das Abrufen der Referenzsequenz. Lösen Sie zuerst die Koordinaten auf (siehe Koordinatenherkunft unten), und fragen Sie dann dieses Skill mit den aufgelösten GRCh38-Koordinaten ab.
  • Jede andere Kohorte als das 1000-Genome-Projekt – dieses Skill dient nur diesem Datensatz.

Voraussetzungen

  1. uv: Das Skript dieses Skills wird mit uv run ausgeführt, das die Inline-Abhängigkeitsmetadaten des Skripts liest und eine temporäre Umgebung bereitstellt. Stellen Sie sicher, dass uv installiert und im PATH ist (https://docs.astral.sh/uv/).
  2. Nutzungsbedingungen: Die Daten des 1000-Genome-Projekts sind offen; Benutzer sollten sich der Nutzungsbedingungen des 1000-Genome-Projekts / IGSR bewusst sein (https://www.internationalgenome.org/data).
  3. Zugriffsbeschränkungen: Es gibt keinen API-Schlüssel, keine .env-Datei und kein Ratenbegrenzungs-Token, das konfiguriert werden muss.
  4. Keine Anmeldeinformationen erforderlich

Kernregeln

  • Verwenden Sie die Wrapper: Führen Sie IMMER die bereitgestellten Hilfsskripte aus, anstatt Ihre eigenen Client-Aufrufe oder Netzwerkanfragen zu konstruieren. Verwenden Sie scripts/onekgpd_api.py für Varianten-/Proben-/Verwandtschaftsabfragen (es übernimmt die Verbindung, das Streaming, die Paginierung und die JSON-Serialisierung), und scripts/onekgpd_meta.py für Proben-/Populationsmetadaten (offline, siehe Proben- & Populationsmetadaten).
  • Koordinaten MÜSSEN zuerst gegen eine autoritative Quelle aufgelöst werden – siehe Koordinatenherkunft. Dies ist zwingend, nicht empfohlen.
  • Zählen Sie vor dem Auswählen: Jede Varianten- und Probenauswahl hat einen gepaarten Zähl-Befehl. Führen Sie den Zähl-Befehl ZUERST aus, um die Größe des Ergebnisses zu ermitteln, und wählen Sie dann nur aus, wenn die Anzahl überschaubar ist.
  • Zygosität standardmäßig beide: Auswahl- und Zähl-Befehle umfassen standardmäßig sowohl heterozygote als auch homozygote Träger. Schränken Sie mit --het-only oder --hom-only ein, wenn die Frage sich auf einen bestimmten Zustand bezieht. (Sie müssen nichts übergeben, um beide zu erhalten.)
  • Ausgabe: Skripte schreiben vollständiges JSON in eine Datei (--output, standardmäßig unter /tmp/) und geben eine prägnante Zusammenfassung auf stdout aus. Lesen Sie keine großen JSON-Dateien in den Kontext – verwenden Sie jq oder ein kleines, einmalig ausgeführtes uv run python-Snippet, um Felder zu extrahieren.

Koordinatenherkunft (Zwingender erster Schritt)

Lösen Sie vor jeder regionsbasierten Abfrage das Gen oder Merkmal in GRCh38-Koordinaten gegen eine autoritative Quelle (z. B. Ensembl) auf, und führen Sie die Abfrage mit diesen aufgelösten Koordinaten durch. Die Assemblierung muss explizit sein, und ein Genbereich muss vor der Verwendung in präzise Positionen aufgelöst werden. Dies ist strukturell, nicht empfohlen: Es gibt keine serverseitige Sicherung, die einen falsch platzierten Bereich abfangen würde, daher liefert eine ungeprüfte Koordinate Ergebnisse für eine unbeabsichtigte Position ohne Fehler.

# Lösen Sie zuerst das Gensymbol -> GRCh38-Region mit einer autoritativen Quelle auf,
# und übergeben Sie dann die verifizierten Koordinaten an die OneKGPd-Abfrage unten.

[!CAUTION] Der Datensatz ist GRCh38. Eine GRCh37-Koordinate oder jede Region, die nicht korrekt der beabsichtigten Position auf GRCh38 entspricht, wird Ergebnisse für eine unbeabsichtigte Position zurückgeben, ohne einen Fehler auszulösen. Überprüfen Sie die Assemblierung und die aufgelösten Koordinaten vor der Abfrage.

Befehlsauswahl-Leitfaden

Ordnen Sie die Frage dem Befehl zu. Zähl-Befehle sind günstig und sollten ihrem Auswahl-Gegenstück vorausgehen.

  • Welche Individuen tragen passende Varianten in einer Region → count-samples dann select-samples
  • Welche Varianten werden in einer Region getragen, kohortenweit → count-variants dann select-variants
  • Welche Varianten werden in einer Region getragen, innerhalb einer benannten Gruppe von Individuen → count-variants-in-samples dann select-variants-in-samples
  • Wer ist homozygot-Referenz an einer einzelnen Position → count-samples-hom-ref dann select-samples-hom-ref
  • Verwandtschaft (Grad + Koeffizient) zwischen zwei benannten Individuen → kinship
  • Gesamtzahlen des Datensatzes (Probenanzahl, Geschlechterverteilung, Variantenanzahl, Assemblierung) → dataset-info

Annotationsfilter (gemeinsam für Varianten- und Probenauswahl/-zählung)

Alle Varianten- und Probenauswahl-Befehle (count-variants, select-variants, deren -in-samples-Formen, count-samples, select-samples) akzeptieren dieselben Annotationsfilter. Verschiedene Filterfelder werden mit UND kombiniert; mehrere Werte innerhalb eines Feldes werden mit ODER kombiniert. Aufzählungswerte sind Groß-/Kleinschreibung-unabhängig (z. B. missense_variant oder MISSENSE_VARIANT).

Dies sind Auswahlkriterien, die auf dem Server angewendet werden. Die Felder, die für eine ausgewählte Variante zurückgegeben werden, sind unter Variantenrückgabe-Befehle aufgeführt; ein Kriterium, das zum Filtern verwendet wird, wird nicht unbedingt auf der zurückgegebenen Variante wiederholt.

  • --af-lt / --af-gt: Grenzen der Allelfrequenz des 1000-Genome-Datensatzes
  • --gnomad-exomes-af-lt / --gnomad-exomes-af-gt: Grenzen der gnomAD v4.1 Exom-AF
  • --gnomad-genomes-af-lt / --gnomad-genomes-af-gt: Grenzen der gnomAD v4.1 Genom-AF
  • --clin-significance: ClinVar-Signifikanz-Begriffe, CSV (z. B. PATHOGENIC,LIKELY_PATHOGENIC)
  • --consequence: Konsequenz-Begriffe der Sequence Ontology, CSV (z. B. MISSENSE_VARIANT,STOP_GAINED)
  • --impact: VEP-Auswirkung, CSV (HIGH,MODERATE,LOW,MODIFIER)
  • --variant-type, --feature-type, --bio-type: SO-Variantenklasse / VEP-Feature / VEP-Biotyp, CSV
  • --alpha-missense-class: AM_LIKELY_BENIGN,AM_LIKELY_PATHOGENIC,AM_AMBIGUOUS (CSV)
  • --alpha-missense-score-lt / --alpha-missense-score-gt: AlphaMissense-Score-Grenzen
  • --biallelic-only / --multiallelic-only
  • --exclude-males / --exclude-females
  • --min-len-bp / --max-len-bp: Grenzen der Länge des Alternativ-Allels (bp)

[!NOTE] --alpha-missense-class und --alpha-missense-score-* schließen sich gegenseitig aus (das System ignoriert die Klasse, wenn eine Score-Grenze gesetzt ist). --biallelic-only und --multiallelic-only schließen sich gegenseitig aus. --exclude-males und --exclude-females schließen sich gegenseitig aus. Das Setzen einer *-gt-Grenze, die größer oder gleich ihrer entsprechenden *-lt-Grenze ist, definiert einen leeren Bereich und wird nichts zurückgeben.

[!NOTE] Allelfrequenz-Felder verwenden 0.0, um „nicht in dieser Quelle vorhanden“ zu bedeuten. Also wählt --gnomad-exomes-af-gt 0 Varianten aus, die in gnomAD-Exomen vorhanden sind; ein zurückgegebenes gnomad_exomes_af von 0.0 bedeutet, dass die Variante in gnomAD-Exomen fehlt. Gleiche Konvention für die gnomAD-Genom-AF. Umgekehrt schließen die Grenzen --gnomad-exomes-af-lt / --gnomad-genomes-af-lt nicht annotierte Varianten ein: „AF < X in gnomAD“ schließt Varianten mit gnomAD-AF = 0 ein, d.h. nicht annotierte; kombinieren Sie sie mit --gnomad-*-af-gt 0, um das Vorhandensein in gnomAD zu erzwingen.

[!NOTE] am_score von 0.0 bedeutet nicht bewertet oder nicht von AlphaMissense annotiert – es bedeutet nicht gutartig. Ein echter AlphaMissense-Score ist immer größer als 0.

Schnellstart

# Schritt 1. Lösen Sie Koordinaten gegen eine autoritative Quelle auf – siehe Koordinatenherkunft.
#    Beispiel: BRCA1: chr17:43044292-43170245
# Schritt 2. Größe des Ergebnisses ermitteln: Wie viele Individuen tragen vorhergesagte wahrscheinlich
#    pathogene Missense-Varianten in dieser Region?
uv run scripts/onekgpd_api.py count-samples \
  --chrom chr17 --start 43044292 --end 43170245 \
  --consequence MISSENSE_VARIANT \
  --alpha-missense-class AM_LIKELY_PATHOGENIC \
  --output /tmp/count.json
# Schritt 3. Wenn die Anzahl überschaubar ist, listen Sie diese Individuen auf.
uv run scripts/onekgpd_api.py select-samples \
  --chrom chr17 --start 43044292 --end 43170245 \
  --consequence MISSENSE_VARIANT \
  --alpha-missense-class AM_LIKELY_PATHOGENIC \
  --output /tmp/samples.json
# Schritt 4: Für diese Gruppe von Individuen die tatsächlichen Varianten anzeigen, die sie tragen.
uv run scripts/onekgpd_api.py select-variants-in-samples \
  --chrom chr17 --start 43044292 --end 43170245 \
  --samples HG03169,NA20506 \
  --consequence MISSENSE_VARIANT --alpha-missense-class AM_LIKELY_PATHOGENIC \
  --output /tmp/variants.json

Befehle

Jeder Befehl schreibt vollständiges JSON in eine Datei (--output PFAD, standardmäßig eine temporäre Datei) und gibt eine prägnante stdout-Zusammenfassung aus. Alle Region-/Proben-Befehle teilen sich: die Regionseingabe (--chrom/--start/--end mit optionalem --ref/--alt, oder eine oder mehrere wiederholte --region CHR:START-END), die Zygositätsflags (--het-only/--hom-only, Standard beide), und die Annotationsfilter oben. Die vollständigen tabellen pro Flag finden Sie in references/onekgpd_commands.md.

Variantenrückgabe-Befehle

select-* gibt passende Varianten zurück; count-* gibt eine ganze Zahl zurück.

  • count-variants – zählt Varianten in einer Region, kohortenweit.
  • select-variants – wählt Varianten in einer Region aus, kohortenweit. Verwenden Sie --limit N (hartes Limit, Standard 200) oder --page-size N (ruft den vollständigen Satz in Seiten ab); die beiden schließen sich gegenseitig aus. Das Zusammenfassungsflag truncated wird gesetzt, wenn die Obergrenze erreicht ist.
  • count-variants-in-samples – wie count-variants, eingeschränkt auf --samples NAME1,NAME2,... (erforderlich).
  • select-variants-in-samples – wie select-variants, eingeschränkt auf --samples NAME1,NAME2,... (erforderlich).

Jede zurückgegebene Variante trägt diese 22 Schlüssel: chr, start, end, ref, alt, af, ac, an, hom_samples, het_samples, mis_samples, hom_samples_fx, het_samples_fx, mis_samples_fx, hom_samples_mxy, het_samples_mxy, mis_samples_mxy, gnomad_exomes_af, gnomad_genomes_af, am_score, amino_acids, biallelic. ClinVar-Signifikanz und VEP-Konsequenz sind nur Filterkriterien und werden nicht zurückgegeben. Vollständiges Schema: references/onekgpd_commands.md.

Probenrückgabe-Befehle

  • count-samples – zählt Individuen, die eine passende Variante in einer Region tragen.
  • select-samples – listet die Namen der Individuen auf, die eine passende Variante tragen. Unterstützt --skip N und --limit N. Gibt nur Namen zurück; um zu sehen, welche Varianten ein Individuum qualifiziert haben, übergeben Sie die Namen an select-variants-in-samples.

Homozygot-Referenz-Befehle

Einzelne Position über --chrom + --position (keine Region).

  • count-samples-hom-ref – zählt Individuen mit einem 0/0-Aufruf an der Position. Der Zähler ist ein Sentinel: -1 = an dieser Position existiert überhaupt keine Variante; 0 = eine Variante existiert, aber kein Individuum ist homozygot für die Referenz; >0 = die Anzahl der homozygoten Referenz-Individuen. Die Zusammenfassung gibt an, welcher Fall vorliegt.
  • select-samples-hom-ref – listet die Individuen mit einem 0/0-Aufruf an der Position auf.

Verwandtschafts-Befehl

  • kinship --sample1 NAME --sample2 NAME – Verwandtschaft zwischen zwei benannten Individuen: der Grad (TWINS_MONOZYGOTIC / FIRST_DEGREE / SECOND_DEGREE / THIRD_DEGREE / UNRELATED) und der KING-Verwandtschafts- koeffizient (phi_bwf).

Datensatzmetadaten-Befehl

  • dataset-info – Gesamtzahlen des Datensatzes: samples_total (3.202), weiblich/männlich-Aufteilung, variants_total, assembly (GRCh38) und die Kohortenaufschlüsselung. Keine Region erforderlich; dient gleichzeitig als Konnektivitätsprüfung.

Proben- & Populationsmetadaten (offline)

Population, Geschlecht, Abstammung und Superpopulationsfragen werden von einem zweiten Skript, scripts/onekgpd_meta.py, aus einer im Skill gebündelten Datendatei beantwortet – kein Netzwerk, keine Anmeldeinformationen, keine Koordinaten. Die Proben-IDs sind dieselben Namen, die auch die Varianten-Befehle verwenden, sodass sich die beiden Ebenen kombinieren lassen (z. B. eine Kohorte nach Population auswählen, dann ihre Varianten abfragen). Führen Sie uv run scripts/onekgpd_meta.py <befehl> aus.

Die Kohorte hat 5 Superpopulationen (AFR, AMR, EAS, EUR, SAS) und 26 Populationen.

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

Verwandte Skills