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filogenética

Construa e analise árvores filogenéticas usando MAFFT (alinhamento múltiplo), IQ-TREE 2 (máxima verossimilhança) e FastTree (NJ/ML rápido). Visualize com ETE3 ou FigTree. Para análise evolutiva, genômica microbiana, filodinâmica viral, análise de famílias proteicas e estudos de relógio molecular.

O que é filogenética?

A habilidade de filogenética permite que um agente de IA, como Claude Code ou Cursor, realize análises evolutivas completas de sequências biológicas (genes, proteínas, genomas). Ela integra ferramentas bioinformáticas padrão-ouro como MAFFT para alinhamento múltiplo, IQ-TREE 2 para inferência de árvores por máxima verossimilhança com seleção automática de modelos evolutivos, e FastTree para uma aproximação rápida em grandes conjuntos de dados. O fluxo de trabalho é modular e programático, fornecendo funções Python prontas para cada etapa: alinhamento, trimagem opcional com TrimAl, inferência de árvore, e análise e visualização com a biblioteca ETE3. A habilidade é útil em diversos cenários, como traçar relações evolutivas entre organismos ou genes, realizar estudos de filodinâmica viral (ex: rastreio de surtos de SARS-CoV-2), analisar famílias proteicas, detectar transferência horizontal de genes e estimar datas de divergência com relógio molecular. Ela oferece guias práticos de seleção de modelos (DNA e proteínas) e boas práticas, como a importância de verificar a qualidade do alinhamento e usar bootstraps ultrafast (≥1000) para suporte de ramos. Como a implementação é em Python e utiliza chamadas de subprocesso, as ferramentas precisam estar instaladas via Conda ou pip, o que é coberto na seção de instalação.

Funciona com~Claude Code~Codex CLI~Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/phylogenetics

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Documentação

O que filogenética faz?

Visão Geral

A análise filogenética reconstrói a história evolutiva de sequências biológicas (genes, proteínas, genomas) inferindo o padrão de ramificação da descendência. Esta habilidade cobre o pipeline padrão:

  1. MAFFT — Alinhamento múltiplo de sequências
  2. IQ-TREE 2 — Inferência de árvore por máxima verossimilhança com seleção de modelo
  3. FastTree — Máxima verossimilhança aproximada rápida (para grandes conjuntos de dados)
  4. ETE3 — Biblioteca Python para manipulação e visualização de árvores

Instalação:

# Conda (recomendado para ferramentas CLI)
conda install -c bioconda mafft iqtree fasttree
uv pip install ete3

# A renderização TreeStyle/NodeStyle do ete3 depende do backend Qt, portanto a saída de imagem
# precisa do PyQt5; a análise e estatísticas de árvores funcionam sem ele.
uv pip install PyQt5

Quando Usar Esta Habilidade

Use filogenética quando:

  • Relações evolutivas: Qual organismo/gene é mais proximamente relacionado à minha sequência?
  • Filodinâmica viral: Rastreie a propagação de surtos e estime datas de transmissão
  • Análise de famílias proteicas: Infira relações evolutivas dentro de uma família de genes
  • Detecção de transferência horizontal de genes: Identifique genes com árvores de espécies/genes discordantes
  • Reconstrução de sequências ancestrais: Infira sequências proteicas ancestrais
  • Análise de relógio molecular: Estime datas de divergência usando amostragem temporal
  • Acompanhante de GWAS: Coloque variantes em contexto evolutivo (ex: variantes SARS-CoV-2)
  • Microbiologia: Filogenia de espécies a partir de rRNA 16S ou filogenia do genoma central

Fluxo de Trabalho Padrão

1. Alinhamento Múltiplo de Sequências com MAFFT

import subprocess
import os

def run_mafft(input_fasta: str, output_fasta: str, method: str = "auto",
               n_threads: int = 4) -> str:
    """
    Alinha sequências com MAFFT.

    Args:
        input_fasta: Caminho para o arquivo FASTA não alinhado
        output_fasta: Caminho para a saída alinhada
        method: 'auto' (seleção automática), 'einsi' (preciso), 'linsi' (preciso, lento),
                'fftnsi' (médio), 'fftns' (rápido), 'retree2' (rápido)
        n_threads: Número de threads da CPU

    Returns:
        Caminho para o arquivo FASTA alinhado
    """
    methods = {
        "auto": ["mafft", "--auto"],
        "einsi": ["mafft", "--genafpair", "--maxiterate", "1000"],
        "linsi": ["mafft", "--localpair", "--maxiterate", "1000"],
        "fftnsi": ["mafft", "--fftnsi"],
        "fftns": ["mafft", "--fftns"],
        "retree2": ["mafft", "--retree", "2"],
    }

    cmd = methods.get(method, methods["auto"])
    cmd += ["--thread", str(n_threads), "--inputorder", input_fasta]

    with open(output_fasta, 'w') as out:
        result = subprocess.run(cmd, stdout=out, stderr=subprocess.PIPE, text=True)

    if result.returncode != 0:
        raise RuntimeError(f"MAFFT falhou:\n{result.stderr}")

    # Contar sequências alinhadas
    with open(output_fasta) as f:
        n_seqs = sum(1 for line in f if line.startswith('>'))
    print(f"MAFFT: {n_seqs} sequências alinhadas → {output_fasta}")

    return output_fasta

# Guia de seleção de método MAFFT:
# Poucas sequências (<200), preciso: linsi ou einsi
# Muitas sequências (<1000), moderado: fftnsi
# Grandes conjuntos de dados (>1000): fftns ou auto
# Ultra-rápido (>10000): mafft --retree 1

2. Aparar Alinhamento (Opcional, mas Recomendado)

def trim_alignment_trimal(aligned_fasta: str, output_fasta: str,
                            method: str = "automated1") -> str:
    """
    Apara colunas mal alinhadas com TrimAl.

    Métodos:
    - 'automated1': Heurística automática (recomendado)
    - 'gappyout': Remove colunas com gaps
    - 'strict': Limiar estrito de gaps
    """
    cmd = ["trimal", f"-{method}", "-in", aligned_fasta, "-out", output_fasta, "-fasta"]
    result = subprocess.run(cmd, capture_output=True, text=True)
    if result.returncode != 0:
        print(f"Aviso TrimAl: {result.stderr}")
        # Voltar para o alinhamento não aparado
        import shutil
        shutil.copy(aligned_fasta, output_fasta)
    return output_fasta

3. IQ-TREE 2 — Árvore de Máxima Verossimilhança

def run_iqtree(aligned_fasta: str, output_prefix: str,
                model: str = "TEST", bootstrap: int = 1000,
                n_threads: int = 4, extra_args: list = None) -> dict:
    """
    Constrói uma árvore de máxima verossimilhança com IQ-TREE 2.

    Args:
        aligned_fasta: Arquivo FASTA alinhado
        output_prefix: Prefixo para os arquivos de saída
        model: 'TEST' para seleção automática de modelo, ou especifique (ex: 'GTR+G' para DNA,
               'LG+G4' para proteínas, 'JTT+G' para proteínas)
        bootstrap: Número de réplicas de bootstrap ultrafast (1000 recomendado)
        n_threads: Número de threads ('AUTO' para detecção automática)
        extra_args: Argumentos adicionais do IQ-TREE

    Returns:
        Dicionário com caminhos para os arquivos de saída
    """
    cmd = [
        "iqtree2",
        "-s", aligned_fasta,
        "--prefix", output_prefix,
        "-m", model,
        "-B", str(bootstrap),   # Bootstrap ultrafast
        "-T", str(n_threads),
        "--redo"                # Sobrescrever resultados existentes
    ]

    if extra_args:
        cmd.extend(extra_args)

    result = subprocess.run(cmd, capture_output=True, text=True)

    if result.returncode != 0:
        raise RuntimeError(f"IQ-TREE falhou:\n{result.stderr}")

    # Imprimir resultado da seleção de modelo
    log_file = f"{output_prefix}.log"
    if os.path.exists(log_file):
        with open(log_file) as f:
            for line in f:
                if "Best-fit model" in line:
                    print(f"IQ-TREE: {line.strip()}")

    output_files = {
        "tree": f"{output_prefix}.treefile",
        "log": f"{output_prefix}.log",
        "iqtree": f"{output_prefix}.iqtree",  # Relatório completo
        "model": f"{output_prefix}.model.gz",
    }

    print(f"IQ-TREE: Árvore salva em {output_files['tree']}")
    return output_files

# Guia de seleção de modelo IQ-TREE:
# DNA:     TEST → GTR+G, HKY+G, TrN+G
# Proteína: TEST → LG+G4, WAG+G, JTT+G, Q.pfam+G
# Códon:   TEST → MG+F3X4

# Para análise temporal (relógio molecular), adicione:
# extra_args = ["--date", "dates.txt", "--clock-test", "--date-CI", "95"]

4. FastTree — ML Aproximado Rápido

Para grandes conjuntos de dados (>1000 sequências) onde o IQ-TREE é muito lento:

def run_fasttree(aligned_fasta: str, output_tree: str,
                  sequence_type: str = "nt", model: str = "gtr",
                  n_threads: int = 4) -> str:
    """
    Constrói uma árvore ML aproximada rápida com FastTree.

    Args:
        sequence_type: 'nt' para nucleotídeo ou 'aa' para aminoácido
        model: Para nt: 'gtr' (recomendado) ou 'jc'; para aa: 'lg', 'wag', 'jtt'
    """
    if sequence_type == "nt":
        cmd = ["FastTree", "-nt", "-gtr"]
    else:
        cmd = ["FastTree", f"-{model}"]

    cmd += [aligned_fasta]

    with open(output_tree, 'w') as out:
        result = subprocess.run(cmd, stdout=out, stderr=subprocess.PIPE, text=True)

    if result.returncode != 0:
        raise RuntimeError(f"FastTree falhou:\n{result.stderr}")

    print(f"FastTree: Árvore salva em {output_tree}")
    return output_tree

5. Análise e Visualização de Árvores com ETE3

from ete3 import Tree, TreeStyle, NodeStyle, TextFace, PhyloTree
import matplotlib.pyplot as plt

def load_tree(tree_file: str) -> Tree:
    """Carrega um arquivo de árvore Newick."""
    t = Tree(tree_file)
    print(f"Árvore: {len(t)} folhas, {len(list(t.traverse()))} nós")
    return t

def basic_tree_stats(t: Tree) -> dict:
    """Calcula estatísticas básicas da árvore."""
    leaves = t.get_leaves()
    distances = [t.get_distance(l1, l2) for l1 in leaves[:min(50, len(leaves))]
                 for l2 in leaves[:min(50, len(leaves))] if l1 != l2]

    stats = {
        "n_leaves": len(leaves),
        "n_internal_nodes": len(t) - len(leaves),
        "total_branch_length": sum(n.dist for n in t.traverse()),
        "max_leaf_distance": max(distances) if distances else 0,
        "mean_leaf_distance": sum(distances)/len(distances) if distances else 0,
    }
    return stats

def find_mrca(t: Tree, leaf_names: list) -> Tree:
    """Encontra o ancestral comum mais recente de um conjunto de folhas."""
    return t.get_common_ancestor(*leaf_names)

def visualize_tree(t: Tree, output_file: str = "tree.png",
                    show_branch_support: bool = True,
                    color_groups: dict = None,
                    width: int = 800) -> None:
    """
    Renderiza árvore filogenética para imagem.

    Args:
        t: Objeto Tree do ETE3
        color_groups: Dicionário mapeando leaf_name → color (para colorir táxons)
        show_branch_support: Mostrar valores de bootstrap
    """
    ts = TreeStyle()
    ts.show_leaf_name = True
    ts.show_branch_support = show_branch_support
    ts.mode = "r"  # 'r' = retangular, 'c' = circular

    if color_groups:
        for node in t.traverse():
            if node.is_leaf() and node.name in color_groups:
                nstyle = NodeStyle()
                nstyle["fgcolor"] = color_groups[node.name]
                nstyle["size"] = 8
                node.set_style(nstyle)

    t.render(output_file, tree_style=ts, w=width, units="px")
    print(f"Árvore salva em: {output_file}")

def midpoint_root(t: Tree) -> Tree:
    """Enraíza a árvore no ponto médio (use quando o grupo externo for desconhecido)."""
    t.set_outgroup(t.get_midpoint_outgroup())
    return t

def prune_tree(t: Tree, keep_leaves: list) -> Tree:
    """Poda a árvore para manter apenas as folhas especificadas."""
    t.prune(keep_leaves, preserve_branch_length=True)
    return t

6. Script de Análise Completo

import subprocess, os
from ete3 import Tree

def full_phylogenetic_analysis(
    input_fasta: str,
    output_dir: str = "phylo_results",
    sequence_type: str = "nt",
    n_threads: int = 4,
    bootstrap: int = 1000,
    use_fasttree: bool = False
) -> dict:
    """
    Pipeline filogenético completo: alinhar → aparar → árvore → visualizar.

    Args:
        input_fasta: FASTA não alinhado
        sequence_type: 'nt' (nucleotídeo) ou 'aa' (aminoácido/proteína)
        use_fasttree: Usar FastTree em vez de IQ-TREE (mais rápido para grandes conjuntos de dados)
    """
    os.makedirs(output_dir, exist_ok=True)
    prefix = os.path.join(output_dir, "phylo")

    print("=" * 50)
    print("Etapa 1: Alinhamento Múltiplo de Sequências (MAFFT)")
    aligned = run_mafft(input_fasta, f"{prefix}_aligned.fasta",
                         method="auto", n_threads=n_threads)

    print("\nEtapa 2: Inferência de Árvore")
    if use_fasttree:
        tree_file = run_fasttree(
            aligned, f"{prefix}.tree",
            sequence_type=sequence_type,
            model="gtr" if sequence_type == "nt" else "lg"
        )
    else:
        model = "TEST" if sequence_type == "nt" else "TEST"
        iqtree_files = run_iqtree(
            aligned, prefix,
            model=model,
            bootstrap=bootstrap,
            n_threads=n_threads
        )
        tree_file = iqtree_files["tree"]

    print("\nEtapa 3: Análise da Árvore")
    t = Tree(tree_file)
    t = midpoint_root(t)

    stats = basic_tree_stats(t)
    print(f"Estatísticas da árvore: {stats}")

    print("\nEtapa 4: Visualização")
    visualize_tree(t, f"{prefix}_tree.png", show_branch_support=True)

    # Salvar árvore enraizada
    rooted_tree_file = f"{prefix}_rooted.nwk"
    t.write(format=1, outfile=rooted_tree_file)

    results = {
        "aligned_fasta": aligned,
        "tree_file": tree_file,
        "rooted_tree": rooted_tree_file,
        "visualization": f"{prefix}_tree.png",
        "stats": stats
    }

    print("\n" + "=" * 50)
    print("Análise filogenética concluída!")
    print(f"Resultados em: {output_dir}/")
    return results

Guia de Modelos IQ-TREE

Modelos de DNA

ModeloDescriçãoCaso de uso
GTR+G4General Time Reversible + GamaModelo de DNA mais flexível
HKY+G4Hasegawa-Kishino-Yano + GamaModelo de duas taxas (comum)
TrN+G4Tamura-NeiTransições desiguais
JCJukes-CantorMais simples; todas as taxas iguais

Modelos de Proteína

ModeloDescriçãoCaso de uso
LG+G4Le-Gascuel + GamaMelhor modelo médio de proteína
WAG+G4Whelan-GoldmanAmplamente usado
JTT+G4Jones-Taylor-ThorntonModelo clássico
Q.pfam+G4Treinado em PfamPara famílias proteicas similares a Pfam
Q.bird+G4Específico para avesProteínas de vertebrados

Dica: Use -m TEST para que o IQ-TREE selecione automaticamente o melhor modelo.

Melhores Práticas

  • Qualidade do alinhamento primeiro: Alinhamento ruim → árvores não confiáveis; verifique o alinhamento manualmente
  • Use linsi para alinhamentos pequenos (<200 seq), fftns ou auto para grandes
  • Seleção de modelo: Sempre use -m TEST para IQ-TREE, a menos que tenha um motivo específico
  • Bootstrap: Use ≥1000 bootstraps ultrafast (-B 1000) para suporte de ramos
  • Enraíze a árvore: Árvores não enraizadas podem ser enganosas; use grupo externo ou enraizamento no ponto médio
  • FastTree para >5000 sequências: IQ-TREE fica lento; FastTree é 10–100× mais rápido
  • Aparar alinhamentos longos: TrimAl remove colunas não confiáveis; melhora a precisão da árvore
  • Verifique recombinação em sequências virais/bacterianas antes de construir árvores (RDP4, GARD)

Recursos Adicionais

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

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