Communitygithub.com

phylogenetics

Construire et analyser des arbres phylogénétiques avec MAFFT (alignement multiple), IQ-TREE 2 (maximum de vraisemblance) et FastTree (NJ/ML rapide). Visualiser avec ETE3 ou FigTree. Pour l'analyse évolutive, la génomique microbienne, la phylodynamique virale, l'analyse des familles de protéines et les études d'horloge moléculaire.

Qu'est-ce que phylogenetics ?

Cette compétence permet de réaliser l'ensemble du pipeline d'analyse phylogénétique, depuis l'alignement de séquences jusqu'à la visualisation d'arbres, en utilisant des outils standards comme MAFFT, IQ-TREE 2, FastTree et la bibliothèque Python ETE3. Elle est particulièrement utile pour les développeurs et les utilisateurs d'agents IA travaillant dans les domaines de la biologie évolutive, de la génomique microbienne, de la phylodynamique virale, de l'analyse des familles de protéines et des études d'horloge moléculaire. La compétence fournit des fonctions Python prêtes à l'emploi, avec des paramètres personnalisables, pour l'alignement multiple, la sélection de modèles, l'inférence d'arbres et la visualisation. Elle couvre l'installation des dépendances via conda et pip, et offre des conseils sur les meilleures pratiques comme le choix de la méthode d'alignement, la sélection du modèle évolutif et l'évaluation de la fiabilité des branches par bootstrap.

Compatible avec~Claude Code~Codex CLI~Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/phylogenetics

Demander à votre IA préférée

Ouvre une nouvelle conversation avec cette compétence d'agent déjà préchargée.

Documentation

Phylogénétique

Aperçu

L'analyse phylogénétique reconstitue l'histoire évolutive de séquences biologiques (gènes, protéines, génomes) en inférant le motif de ramification de la descendance. Cette compétence couvre le pipeline standard :

  1. MAFFT — Alignement multiple de séquences
  2. IQ-TREE 2 — Inférence d'arbre par maximum de vraisemblance avec sélection de modèle
  3. FastTree — Maximum de vraisemblance approximatif rapide (pour grands jeux de données)
  4. ETE3 — Bibliothèque Python pour la manipulation et la visualisation d'arbres

Installation :

# Conda (recommandé pour les outils en ligne de commande)
conda install -c bioconda mafft iqtree fasttree
uv pip install ete3

# Le rendu TreeStyle/NodeStyle d'ete3 dépend de son backend Qt, donc la sortie d'image
# nécessite PyQt5 également ; l'analyse et les statistiques d'arbres fonctionnent sans.
uv pip install PyQt5

Quand utiliser cette compétence

Utilisez la phylogénétique lorsque :

  • Relations évolutives : Quel organisme/gène est le plus proche de ma séquence ?
  • Phylodynamique virale : Tracer la propagation d'une épidémie et estimer les dates de transmission
  • Analyse des familles de protéines : Inférer les relations évolutives au sein d'une famille de gènes
  • Détection de transfert horizontal de gènes : Identifier les gènes avec des arbres espèces/gènes discordants
  • Reconstruction de séquences ancestrales : Inférer des séquences protéiques ancestrales
  • Analyse d'horloge moléculaire : Estimer les dates de divergence en utilisant un échantillonnage temporel
  • Compagnon d'étude d'association pangénomique (GWAS) : Placer les variants dans un contexte évolutif (par exemple, variants du SARS-CoV-2)
  • Microbiologie : Phylogénie d'espèces à partir de l'ARNr 16S ou phylogénie du génome central

Flux de travail standard

1. Alignement multiple de séquences avec MAFFT

import subprocess
import os

def run_mafft(input_fasta: str, output_fasta: str, method: str = "auto",
               n_threads: int = 4) -> str:
    """
    Aligner des séquences avec MAFFT.

    Args :
        input_fasta : Chemin vers le fichier FASTA non aligné
        output_fasta : Chemin pour la sortie alignée
        method : 'auto' (auto-sélection), 'einsi' (précis), 'linsi' (précis, lent),
                'fftnsi' (moyen), 'fftns' (rapide), 'retree2' (rapide)
        n_threads : Nombre de threads CPU

    Renvoie :
        Chemin vers le fichier FASTA aligné
    """
    methods = {
        "auto": ["mafft", "--auto"],
        "einsi": ["mafft", "--genafpair", "--maxiterate", "1000"],
        "linsi": ["mafft", "--localpair", "--maxiterate", "1000"],
        "fftnsi": ["mafft", "--fftnsi"],
        "fftns": ["mafft", "--fftns"],
        "retree2": ["mafft", "--retree", "2"],
    }

    cmd = methods.get(method, methods["auto"])
    cmd += ["--thread", str(n_threads), "--inputorder", input_fasta]

    with open(output_fasta, 'w') as out:
        result = subprocess.run(cmd, stdout=out, stderr=subprocess.PIPE, text=True)

    if result.returncode != 0:
        raise RuntimeError(f"MAFFT a échoué :\n{result.stderr}")

    # Compter les séquences alignées
    with open(output_fasta) as f:
        n_seqs = sum(1 for line in f if line.startswith('>'))
    print(f"MAFFT : {n_seqs} séquences alignées → {output_fasta}")

    return output_fasta

# Guide de sélection de méthode MAFFT :
# Peu de séquences (<200), précis : linsi ou einsi
# Nombreuses séquences (<1000), modéré : fftnsi
# Grands jeux de données (>1000) : fftns ou auto
# Ultra-rapide (>10000) : mafft --retree 1

2. Rogner l'alignement (optionnel mais recommandé)

def trim_alignment_trimal(aligned_fasta: str, output_fasta: str,
                            method: str = "automated1") -> str:
    """
    Rogner les colonnes mal alignées avec TrimAl.

    Méthodes :
    - 'automated1' : Heuristique automatique (recommandée)
    - 'gappyout' : Supprimer les colonnes avec des gaps
    - 'strict' : Seuil strict pour les gaps
    """
    cmd = ["trimal", f"-{method}", "-in", aligned_fasta, "-out", output_fasta, "-fasta"]
    result = subprocess.run(cmd, capture_output=True, text=True)
    if result.returncode != 0:
        print(f"Avertissement TrimAl : {result.stderr}")
        # Revenir à l'alignement non rogné
        import shutil
        shutil.copy(aligned_fasta, output_fasta)
    return output_fasta

3. IQ-TREE 2 — Arbre par maximum de vraisemblance

def run_iqtree(aligned_fasta: str, output_prefix: str,
                model: str = "TEST", bootstrap: int = 1000,
                n_threads: int = 4, extra_args: list = None) -> dict:
    """
    Construire un arbre par maximum de vraisemblance avec IQ-TREE 2.

    Args :
        aligned_fasta : Fichier FASTA aligné
        output_prefix : Préfixe pour les fichiers de sortie
        model : 'TEST' pour une sélection automatique du modèle, ou spécifier (ex., 'GTR+G' pour ADN,
               'LG+G4' pour protéines, 'JTT+G' pour protéines)
        bootstrap : Nombre de répliques de bootstrap ultra-rapide (1000 recommandé)
        n_threads : Nombre de threads ('AUTO' pour détection automatique)
        extra_args : Arguments supplémentaires pour IQ-TREE

    Renvoie :
        Dict avec les chemins vers les fichiers de sortie
    """
    cmd = [
        "iqtree2",
        "-s", aligned_fasta,
        "--prefix", output_prefix,
        "-m", model,
        "-B", str(bootstrap),   # Bootstrap ultra-rapide
        "-T", str(n_threads),
        "--redo"                # Écraser les résultats existants
    ]

    if extra_args:
        cmd.extend(extra_args)

    result = subprocess.run(cmd, capture_output=True, text=True)

    if result.returncode != 0:
        raise RuntimeError(f"IQ-TREE a échoué :\n{result.stderr}")

    # Afficher le résultat de la sélection de modèle
    log_file = f"{output_prefix}.log"
    if os.path.exists(log_file):
        with open(log_file) as f:
            for line in f:
                if "Best-fit model" in line:
                    print(f"IQ-TREE : {line.strip()}")

    output_files = {
        "tree": f"{output_prefix}.treefile",
        "log": f"{output_prefix}.log",
        "iqtree": f"{output_prefix}.iqtree",  # Rapport complet
        "model": f"{output_prefix}.model.gz",
    }

    print(f"IQ-TREE : Arbre sauvegardé dans {output_files['tree']}")
    return output_files

# Guide de sélection de modèle IQ-TREE :
# ADN :     TEST → GTR+G, HKY+G, TrN+G
# Protéine : TEST → LG+G4, WAG+G, JTT+G, Q.pfam+G
# Codon :   TEST → MG+F3X4

# Pour une analyse temporelle (horloge moléculaire), ajoutez :
# extra_args = ["--date", "dates.txt", "--clock-test", "--date-CI", "95"]

4. FastTree — ML approximatif rapide

Pour les grands jeux de données (>1000 séquences) où IQ-TREE est trop lent :

def run_fasttree(aligned_fasta: str, output_tree: str,
                  sequence_type: str = "nt", model: str = "gtr",
                  n_threads: int = 4) -> str:
    """
    Construire un arbre ML approximatif rapide avec FastTree.

    Args :
        sequence_type : 'nt' pour nucléotide ou 'aa' pour acide aminé
        model : Pour nt : 'gtr' (recommandé) ou 'jc' ; pour aa : 'lg', 'wag', 'jtt'
    """
    if sequence_type == "nt":
        cmd = ["FastTree", "-nt", "-gtr"]
    else:
        cmd = ["FastTree", f"-{model}"]

    cmd += [aligned_fasta]

    with open(output_tree, 'w') as out:
        result = subprocess.run(cmd, stdout=out, stderr=subprocess.PIPE, text=True)

    if result.returncode != 0:
        raise RuntimeError(f"FastTree a échoué :\n{result.stderr}")

    print(f"FastTree : Arbre sauvegardé dans {output_tree}")
    return output_tree

5. Analyse et visualisation d'arbres avec ETE3

from ete3 import Tree, TreeStyle, NodeStyle, TextFace, PhyloTree
import matplotlib.pyplot as plt

def load_tree(tree_file: str) -> Tree:
    """Charger un fichier d'arbre au format Newick."""
    t = Tree(tree_file)
    print(f"Arbre : {len(t)} feuilles, {len(list(t.traverse()))} nœuds")
    return t

def basic_tree_stats(t: Tree) -> dict:
    """Calculer les statistiques de base d'un arbre."""
    leaves = t.get_leaves()
    distances = [t.get_distance(l1, l2) for l1 in leaves[:min(50, len(leaves))]
                 for l2 in leaves[:min(50, len(leaves))] if l1 != l2]

    stats = {
        "n_leaves": len(leaves),
        "n_internal_nodes": len(t) - len(leaves),
        "total_branch_length": sum(n.dist for n in t.traverse()),
        "max_leaf_distance": max(distances) if distances else 0,
        "mean_leaf_distance": sum(distances)/len(distances) if distances else 0,
    }
    return stats

def find_mrca(t: Tree, leaf_names: list) -> Tree:
    """Trouver l'ancêtre commun le plus récent d'un ensemble de feuilles."""
    return t.get_common_ancestor(*leaf_names)

def visualize_tree(t: Tree, output_file: str = "tree.png",
                    show_branch_support: bool = True,
                    color_groups: dict = None,
                    width: int = 800) -> None:
    """
    Rendre un arbre phylogénétique en image.

    Args :
        t : Objet Tree ETE3
        color_groups : Dict mappant nom_feuille → couleur (pour colorer les taxons)
        show_branch_support : Afficher les valeurs de bootstrap
    """
    ts = TreeStyle()
    ts.show_leaf_name = True
    ts.show_branch_support = show_branch_support
    ts.mode = "r"  # 'r' = rectangulaire, 'c' = circulaire

    if color_groups:
        for node in t.traverse():
            if node.is_leaf() and node.name in color_groups:
                nstyle = NodeStyle()
                nstyle["fgcolor"] = color_groups[node.name]
                nstyle["size"] = 8
                node.set_style(nstyle)

    t.render(output_file, tree_style=ts, w=width, units="px")
    print(f"Arbre sauvegardé dans : {output_file}")

def midpoint_root(t: Tree) -> Tree:
    """Enraciner l'arbre au point médian (à utiliser lorsque le groupe externe est inconnu)."""
    t.set_outgroup(t.get_midpoint_outgroup())
    return t

def prune_tree(t: Tree, keep_leaves: list) -> Tree:
    """Élaguer l'arbre pour ne conserver que les feuilles spécifiées."""
    t.prune(keep_leaves, preserve_branch_length=True)
    return t

6. Script d'analyse complet

import subprocess, os
from ete3 import Tree

def full_phylogenetic_analysis(
    input_fasta: str,
    output_dir: str = "phylo_results",
    sequence_type: str = "nt",
    n_threads: int = 4,
    bootstrap: int = 1000,
    use_fasttree: bool = False
) -> dict:
    """
    Pipeline phylogénétique complet : aligner → rogner → arbre → visualiser.

    Args :
        input_fasta : FASTA non aligné
        sequence_type : 'nt' (nucléotide) ou 'aa' (acide aminé/protéine)
        use_fasttree : Utiliser FastTree au lieu d'IQ-TREE (plus rapide pour les grands jeux de données)
    """
    os.makedirs(output_dir, exist_ok=True)
    prefix = os.path.join(output_dir, "phylo")

    print("=" * 50)
    print("Étape 1 : Alignement multiple de séquences (MAFFT)")
    aligned = run_mafft(input_fasta, f"{prefix}_aligned.fasta",
                         method="auto", n_threads=n_threads)

    print("\nÉtape 2 : Inférence de l'arbre")
    if use_fasttree:
        tree_file = run_fasttree(
            aligned, f"{prefix}.tree",
            sequence_type=sequence_type,
            model="gtr" if sequence_type == "nt" else "lg"
        )
    else:
        model = "TEST" if sequence_type == "nt" else "TEST"
        iqtree_files = run_iqtree(
            aligned, prefix,
            model=model,
            bootstrap=bootstrap,
            n_threads=n_threads
        )
        tree_file = iqtree_files["tree"]

    print("\nÉtape 3 : Analyse de l'arbre")
    t = Tree(tree_file)
    t = midpoint_root(t)

    stats = basic_tree_stats(t)
    print(f"Statistiques de l'arbre : {stats}")

    print("\nÉtape 4 : Visualisation")
    visualize_tree(t, f"{prefix}_tree.png", show_branch_support=True)

    # Sauvegarder l'arbre enraciné
    rooted_tree_file = f"{prefix}_rooted.nwk"
    t.write(format=1, outfile=rooted_tree_file)

    results = {
        "aligned_fasta": aligned,
        "tree_file": tree_file,
        "rooted_tree": rooted_tree_file,
        "visualization": f"{prefix}_tree.png",
        "stats": stats
    }

    print("\n" + "=" * 50)
    print("Analyse phylogénétique terminée !")
    print(f"Résultats dans : {output_dir}/")
    return results

Guide des modèles IQ-TREE

Modèles ADN

ModèleDescriptionCas d'utilisation
GTR+G4Général réversible dans le temps + GammaModèle ADN le plus flexible
HKY+G4Hasegawa-Kishino-Yano + GammaModèle à deux taux (courant)
TrN+G4Tamura-NeiTransitions inégales
JCJukes-CantorLe plus simple ; tous les taux égaux

Modèles protéiques

ModèleDescriptionCas d'utilisation
LG+G4Le-Gascuel + GammaMeilleur modèle protéique moyen
WAG+G4Whelan-GoldmanLargement utilisé
JTT+G4Jones-Taylor-ThorntonModèle classique
Q.pfam+G4Entraîné sur PfamPour les familles de protéines de type Pfam
Q.bird+G4Spécifique aux oiseauxProtéines de vertébrés

Astuce : Utilisez -m TEST pour laisser IQ-TREE sélectionner automatiquement le meilleur modèle.

Bonnes pratiques

  • Qualité de l'alignement d'abord : Un mauvais alignement conduit à des arbres peu fiables ; vérifiez l'alignement manuellement
  • Utilisez linsi pour les petits (<200 seq), fftns ou auto pour les grands alignements
  • Sélection de modèle : Utilisez toujours -m TEST pour IQ-TREE sauf si vous avez une raison spécifique
  • Bootstrap : Utilisez ≥1000 bootstraps ultra-rapides (-B 1000) pour la confiance des branches
  • Enracinez l'arbre : Les arbres non enracinés peuvent être trompeurs ; utilisez un groupe externe ou l'enracinement au point médian
  • FastTree pour >5000 séquences : IQ-TREE devient lent ; FastTree est 10–100× plus rapide
  • Rognez les longs alignements : TrimAl supprime les colonnes peu fiables ; améliore la précision de l'arbre
  • Vérifiez la présence de recombinaison dans les séquences virales/bactériennes avant de construire des arbres (RDP4, GARD)

Ressources supplémentaires

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

Skills associés