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molecular-dynamics

Execute e analise simulações de dinâmica molecular com OpenMM e MDAnalysis. Configure sistemas de proteínas/pequenas moléculas, defina campos de força, execute minimização de energia e MD de produção, analise trajetórias (RMSD, RMSF, mapas de contato, superfícies de energia livre). Para biologia estrutural, ligação de fármacos e biofísica.

O que é molecular-dynamics?

Esta skill oferece um conjunto abrangente de ferramentas para simulações de dinâmica molecular (MD) usando as bibliotecas OpenMM e MDAnalysis no ecossistema Python. Ela permite que um agente de IA prepare sistemas moleculares a partir de arquivos PDB, execute minimização de energia para remover choques estéricos, realize equilibração NVT e NPT e execute corridas de produção de MD de alto desempenho, tudo utilizando aceleração por GPU (CUDA/OpenCL) para eficiência. A skill também fornece funções de análise de trajetória robustas, incluindo cálculo de RMSD, RMSF, e análise de contatos proteína-ligante, bem como orientação sobre seleção de campos de força (como AMBER14 e CHARMM36m). Ela é ideal para pesquisadores em biologia estrutural, descoberta de fármacos e biofísica, e é compatível com plataformas de codificação como Claude Code, Cursor e Codex via execução de código Python. O guia detalhado passo a passo garante fluxos de trabalho reprodutíveis desde a preparação do sistema até a análise, tornando a MD acessível para usuários novatos e experientes.

Funciona com~Claude Code~Codex CLI~Cursor
npx skills add https://github.com/K-Dense-AI/scientific-agent-skills/tree/main/skills/molecular-dynamics

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Documentação

Dinâmica Molecular

Visão Geral

A simulação de dinâmica molecular (MD) modela computacionalmente a evolução temporal de sistemas moleculares integrando as equações de movimento de Newton. Esta skill abrange duas ferramentas complementares:

  • OpenMM (https://openmm.org/): Mecanismo de simulação de MD de alto desempenho com suporte a GPU, API Python e suporte flexível a campos de força
  • MDAnalysis (https://mdanalysis.org/): Biblioteca Python para ler, escrever e analisar trajetórias de MD de todos os principais pacotes de simulação

Instalação:

conda install -c conda-forge openmm mdanalysis nglview
# ou
uv pip install openmm mdanalysis

Quando Usar Esta Skill

Use dinâmica molecular quando:

  • Análise de estabilidade de proteínas: Como uma mutação afeta a dinâmica da proteína?
  • Simulações de ligação de fármacos: Caracterizar o modo de ligação e o tempo de residência de um ligante
  • Amostragem conformacional: Explorar a flexibilidade de proteínas e mudanças conformacionais
  • Interação proteína-proteína: Modelar a dinâmica da interface e a energética de ligação
  • Análise de RMSD/RMSF: Quantificar flutuações estruturais a partir de uma estrutura de referência
  • Estimativa de energia livre: Calcular energia livre de ligação ou energia livre conformacional
  • Simulações de membranas: Modelar proteínas em bicamadas lipídicas
  • Proteínas intrinsecamente desordenadas: Estudar conjuntos conformacionais de IDR

Fluxo de Trabalho Principal: Simulação OpenMM

1. Preparação do Sistema

from openmm.app import *
from openmm import *
from openmm.unit import *
import sys

def prepare_system_from_pdb(pdb_file, forcefield_name="amber14-all.xml",
                              water_model="amber14/tip3pfb.xml"):
    """
    Prepare um sistema OpenMM a partir de um arquivo PDB.

    Args:
        pdb_file: Caminho para o arquivo PDB limpo (use PDBFixer para arquivos PDB brutos)
        forcefield_name: Arquivo XML do campo de força
        water_model: Arquivo XML do modelo de água

    Returns:
        pdb, forcefield, system, topology
    """
    # Carregar PDB
    pdb = PDBFile(pdb_file)

    # Carregar campo de força
    forcefield = ForceField(forcefield_name, water_model)

    # Adicionar hidrogênios e solvatar
    modeller = Modeller(pdb.topology, pdb.positions)
    modeller.addHydrogens(forcefield)

    # Adicionar caixa de solvente (10 Å de preenchimento, NaCl 150 mM)
    modeller.addSolvent(
        forcefield,
        model='tip3p',
        padding=10*angstroms,
        ionicStrength=0.15*molar
    )

    print(f"Sistema: {modeller.topology.getNumAtoms()} átomos, "
          f"{modeller.topology.getNumResidues()} resíduos")

    # Criar sistema
    system = forcefield.createSystem(
        modeller.topology,
        nonbondedMethod=PME,         # Malha de Partículas Ewald para eletrostática de longo alcance
        nonbondedCutoff=1.0*nanometer,
        constraints=HBonds,           # Restringir ligações de hidrogênio (permite passo de tempo de 2 fs)
        rigidWater=True,
        ewaldErrorTolerance=0.0005
    )

    return modeller, system

2. Minimização de Energia

from openmm.app import *
from openmm import *
from openmm.unit import *

def minimize_energy(modeller, system, output_pdb="minimized.pdb",
                     max_iterations=1000, tolerance=10.0):
    """
    Minimizar a energia do sistema para remover choques estéricos.

    Args:
        modeller: Objeto Modeller com topologia e posições
        system: Sistema OpenMM
        output_pdb: Caminho para salvar a estrutura minimizada
        max_iterations: Número máximo de passos de minimização
        tolerance: Critério de convergência em kJ/mol/nm

    Returns:
        objeto de simulação com posições minimizadas
    """
    # Configurar integrador (não importa para minimização)
    integrator = LangevinMiddleIntegrator(300*kelvin, 1/picosecond, 0.004*picoseconds)

    # Criar simulação
    # Usar GPU se disponível (CUDA ou OpenCL), caso contrário CPU
    try:
        platform = Platform.getPlatformByName('CUDA')
        properties = {'DeviceIndex': '0', 'Precision': 'mixed'}
    except Exception:
        try:
            platform = Platform.getPlatformByName('OpenCL')
            properties = {}
        except Exception:
            platform = Platform.getPlatformByName('CPU')
            properties = {}

    simulation = Simulation(
        modeller.topology, system, integrator,
        platform, properties
    )
    simulation.context.setPositions(modeller.positions)

    # Verificar energia inicial
    state = simulation.context.getState(getEnergy=True)
    print(f"Energia inicial: {state.getPotentialEnergy()}")

    # Minimizar
    simulation.minimizeEnergy(
        tolerance=tolerance*kilojoules_per_mole/nanometer,
        maxIterations=max_iterations
    )

    state = simulation.context.getState(getEnergy=True, getPositions=True)
    print(f"Energia minimizada: {state.getPotentialEnergy()}")

    # Salvar estrutura minimizada
    with open(output_pdb, 'w') as f:
        PDBFile.writeFile(simulation.topology, state.getPositions(), f)

    return simulation

3. Equilibração NVT

from openmm.app import *
from openmm import *
from openmm.unit import *

def run_nvt_equilibration(simulation, n_steps=50000, temperature=300,
                            report_interval=1000, output_prefix="nvt"):
    """
    Equilibração NVT: N, V, T constantes.
    Equilibrar velocidades para a temperatura alvo.

    Args:
        simulation: Simulação OpenMM (após minimização)
        n_steps: Número de passos MD (50000 × 2fs = 100 ps)
        temperature: Temperatura em Kelvin
        report_interval: Passos entre relatórios de dados
        output_prefix: Prefixo de arquivo para trajetória e log
    """
    # Adicionar restrições de posição para a espinha dorsal durante NVT
    # (Opcional: restringir átomos pesados)

    # Definir temperatura
    simulation.context.setVelocitiesToTemperature(temperature*kelvin)

    # Adicionar repórteres
    simulation.reporters = []

    # Arquivo de log
    simulation.reporters.append(
        StateDataReporter(
            f"{output_prefix}_log.txt",
            report_interval,
            step=True,
            potentialEnergy=True,
            kineticEnergy=True,
            temperature=True,
            volume=True,
            speed=True
        )
    )

    # Trajetória DCD (formato binário compacto)
    simulation.reporters.append(
        DCDReporter(f"{output_prefix}_traj.dcd", report_interval)
    )

    print(f"Executando equilibração NVT: {n_steps} passos ({n_steps*2/1000:.1f} ps)")
    simulation.step(n_steps)
    print("Equilibração NVT concluída")

    return simulation

4. Equilibração NPT e Produção

def run_npt_production(simulation, n_steps=500000, temperature=300, pressure=1.0,
                        report_interval=5000, output_prefix="npt"):
    """
    Execução de produção NPT: N, P, T constantes.

    Args:
        n_steps: Passos de produção (500000 × 2fs = 1 ns)
        temperature: Temperatura em Kelvin
        pressure: Pressão em bar
        report_interval: Passos entre relatórios
    """
    # Adicionar barostato Monte Carlo para controle de pressão
    system = simulation.context.getSystem()
    system.addForce(MonteCarloBarostat(pressure*bar, temperature*kelvin, 25))
    simulation.context.reinitialize(preserveState=True)

    # Atualizar repórteres
    simulation.reporters = []
    simulation.reporters.append(
        StateDataReporter(
            f"{output_prefix}_log.txt",
            report_interval,
            step=True,
            potentialEnergy=True,
            temperature=True,
            density=True,
            speed=True
        )
    )
    simulation.reporters.append(
        DCDReporter(f"{output_prefix}_traj.dcd", report_interval)
    )

    # Salvar pontos de verificação
    simulation.reporters.append(
        CheckpointReporter(f"{output_prefix}_checkpoint.chk", 50000)
    )

    print(f"Executando produção NPT: {n_steps} passos ({n_steps*2/1000000:.2f} ns)")
    simulation.step(n_steps)
    print("MD de produção concluída")
    return simulation

Análise de Trajetória com MDAnalysis

1. Carregar Trajetória

import MDAnalysis as mda
from MDAnalysis.analysis import rms, align, contacts
import numpy as np
import matplotlib.pyplot as plt

def load_trajectory(topology_file, trajectory_file):
    """
    Carregar uma trajetória MD com MDAnalysis.

    Args:
        topology_file: Arquivo de topologia PDB, PSF ou outro
        trajectory_file: Trajetória DCD, XTC, TRR ou outra
    """
    u = mda.Universe(topology_file, trajectory_file)
    print(f"Universo: {u.atoms.n_atoms} átomos, {u.trajectory.n_frames} quadros")
    print(f"Intervalo de tempo: 0 a {u.trajectory.totaltime:.0f} ps")
    return u

2. Análise RMSD

def compute_rmsd(u, selection="backbone", reference_frame=0):
    """
    Calcular RMSD de átomos selecionados em relação ao quadro de referência.

    Args:
        u: Universo MDAnalysis
        selection: String de seleção de átomos (sintaxe MDAnalysis)
        reference_frame: Índice do quadro para estrutura de referência

    Returns:
        array numpy de valores (tempo, rmsd)
    """
    # Alinhar trajetória para minimizar RMSD
    aligner = align.AlignTraj(u, u, select=selection, in_memory=True)
    aligner.run()

    # Calcular RMSD
    R = rms.RMSD(u, select=selection, ref_frame=reference_frame)
    R.run()

    rmsd_data = R.results.rmsd  # colunas: quadro, tempo, RMSD
    return rmsd_data

def plot_rmsd(rmsd_data, title="RMSD ao longo do tempo", output_file="rmsd.png"):
    """Plotar RMSD ao longo do tempo de simulação."""
    fig, ax = plt.subplots(figsize=(10, 4))
    ax.plot(rmsd_data[:, 1] / 1000, rmsd_data[:, 2], 'b-', linewidth=0.5)
    ax.set_xlabel("Tempo (ns)")
    ax.set_ylabel("RMSD (Å)")
    ax.set_title(title)
    ax.axhline(rmsd_data[:, 2].mean(), color='r', linestyle='--',
               label=f'Média: {rmsd_data[:, 2].mean():.2f} Å')
    ax.legend()
    plt.tight_layout()
    plt.savefig(output_file, dpi=150)
    return fig

3. Análise RMSF (Flexibilidade por Resíduo)

def compute_rmsf(u, selection="backbone", start_frame=0):
    """
    Calcular RMSF por resíduo (flexibilidade).

    Returns:
        arrays de resids, rmsf_values
    """
    # Selecionar átomos
    atoms = u.select_atoms(selection)

    # Calcular RMSF
    R = rms.RMSF(atoms)
    R.run(start=start_frame)

    # Média por resíduo
    resids = []
    rmsf_per_res = []
    for res in u.select_atoms(selection).residues:
        res_atoms = res.atoms.intersection(atoms)
        if len(res_atoms) > 0:
            resids.append(res.resid)
            rmsf_per_res.append(R.results.rmsf[res_atoms.indices].mean())

    return np.array(resids), np.array(rmsf_per_res)

4. Contatos Proteína-Ligante

def analyze_contacts(u, protein_sel="protein", ligand_sel="resname LIG",
                      radius=4.5, start_frame=0):
    """
    Rastrear contatos proteína-ligante ao longo da trajetória.

    Args:
        radius: Distância de corte para contato em Angstroms
    """
    protein = u.select_atoms(protein_sel)
    ligand = u.select_atoms(ligand_sel)

    contact_frames = []
    for ts in u.trajectory[start_frame:]:
        # Encontrar átomos da proteína dentro do raio do ligante
        distances = contacts.contact_matrix(
            protein.positions, ligand.positions, radius
        )
        contact_residues = set()
        for i in range(distances.shape[0]):
            if distances[i].any():
                contact_residues.add(protein.atoms[i].resid)
        contact_frames.append(contact_residues)

    return contact_frames

Guia de Seleção de Campo de Força

SistemaCampo de Força RecomendadoModelo de Água
Proteínas padrãoAMBER14 (amber14-all.xml)TIP3P-FB
Proteínas + pequenas moléculasAMBER14 + GAFF2TIP3P-FB
Proteínas de membranaCHARMM36mTIP3P
Ácidos nucleicosAMBER99-bsc1 ou AMBER14TIP3P
Proteínas desordenadasff19SB ou CHARMM36mTIP3P

Ferramentas de Preparação do Sistema

PDBFixer (para arquivos PDB brutos)

from pdbfixer import PDBFixer
from openmm.app import PDBFile

def fix_pdb(input_pdb, output_pdb, ph=7.0):
    """Corrigir problemas comuns de PDB: resíduos faltantes, átomos, adicionar H, padronizar."""
    fixer = PDBFixer(filename=input_pdb)
    fixer.findMissingResidues()
    fixer.findNonstandardResidues()
    fixer.replaceNonstandardResidues()
    fixer.removeHeterogens(True)    # Remover água/ligantes
    fixer.findMissingAtoms()
    fixer.addMissingAtoms()
    fixer.addMissingHydrogens(ph)

    with open(output_pdb, 'w') as f:
        PDBFile.writeFile(fixer.topology, fixer.positions, f)

    return output_pdb

GAFF2 para Pequenas Moléculas (via OpenFF Toolkit)

# Para parametrização de ligantes, use o OpenFF toolkit ou ACPYPE
# uv pip install openff-toolkit
from openff.toolkit import Molecule, ForceField as OFFForceField
from openff.interchange import Interchange

def parameterize_ligand(smiles, ff_name="openff-2.0.0.offxml"):
    """Gerar parâmetros GAFF2/OpenFF para uma pequena molécula."""
    mol = Molecule.from_smiles(smiles)
    mol.generate_conformers(n_conformers=1)

    off_ff = OFFForceField(ff_name)
    interchange = off_ff.create_interchange(mol.to_topology())
    return interchange

Melhores Práticas

  • Sempre minimizar antes do MD: Estruturas PDB brutas têm choques estéricos
  • Equilibrar antes da produção: NVT (50–100 ps) → NPT (100–500 ps) → Produção
  • Usar GPU: Simulações são 10–100× mais rápidas em GPU (CUDA/OpenCL)
  • Passo de tempo de 2 fs com restrições HBonds: Padrão; use 4 fs com HMR (repartição de massa de hidrogênio)
  • Analisar apenas trajetória equilibrada: Descartar os primeiros 20–50% como equilibração
  • Salvar pontos de verificação: Execuções de MD podem falhar; pontos de verificação permitem reinício
  • Condições de contorno periódicas: Necessário para sistemas solvatados
  • PME para eletrostática: Mais preciso que métodos de corte para sistemas carregados

Recursos Adicionais

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

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