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Dynamique Moléculaire

Exécuter et analyser des simulations de dynamique moléculaire avec OpenMM et MDAnalysis. Configurer des systèmes protéine/petite molécule, définir des champs de force, réaliser une minimisation d'énergie et une production MD, analyser les trajectoires (RMSD, RMSF, cartes de contact, surfaces d'énergie libre). Pour la biologie structurale, la liaison de médicaments et la biophysique.

Qu'est-ce que Dynamique Moléculaire ?

Cette compétence permet de réaliser des simulations de dynamique moléculaire (MD) complètes en utilisant OpenMM pour la simulation haute performance et MDAnalysis pour l'analyse de trajectoires. Elle est idéale pour la biologie structurale, la liaison de médicaments et la biophysique, couvrant la préparation de systèmes (PDBFixer, GAFF2), la minimisation d'énergie, l'équilibration (NVT, NPT) et des simulations de production. L'analyse de trajectoires inclut les calculs de RMSD, RMSF, les cartes de contact et les paramétrages de champs de force. Cette compétence guide les utilisateurs dans le choix des meilleures pratiques (minimisation, équilibration, utilisation du GPU, PME) et fournit des exemples de code Python prêts à l'emploi, avec support pour les systèmes protéine-ligand, les protéines membranaires et les protéines intrinsèquement désordonnées.

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Documentation

Que fait Dynamique Moléculaire ?

Aperçu

La simulation de dynamique moléculaire (DM) modélise informatiquement l'évolution temporelle de systèmes moléculaires en intégrant les équations du mouvement de Newton. Cette compétence couvre deux outils complémentaires :

  • OpenMM (https://openmm.org/) : Moteur de simulation DM haute performance avec support GPU, API Python et prise en charge flexible des champs de force
  • MDAnalysis (https://mdanalysis.org/) : Bibliothèque Python pour lire, écrire et analyser les trajectoires DM de tous les principaux packages de simulation

Installation :

conda install -c conda-forge openmm mdanalysis nglview
# ou
uv pip install openmm mdanalysis

Quand utiliser cette compétence

Utilisez la dynamique moléculaire lorsque :

  • Analyse de stabilité protéique : Comment une mutation affecte-t-elle la dynamique d'une protéine ?
  • Simulations de liaison de médicaments : Caractériser le mode de liaison et le temps de résidence d'un ligand
  • Échantillonnage conformational : Explorer la flexibilité protéique et les changements conformationnels
  • Interaction protéine-protéine : Modéliser la dynamique d'interface et l'énergétique de liaison
  • Analyse RMSD/RMSF : Quantifier les fluctuations structurales par rapport à une structure de référence
  • Estimation d'énergie libre : Calculer l'énergie libre de liaison ou l'énergie libre conformationnelle
  • Simulations membranaires : Modéliser des protéines dans des bicouches lipidiques
  • Protéines intrinsèquement désordonnées : Étudier les ensembles conformationnels des PID

Flux de travail de base : Simulation OpenMM

1. Préparation du système

from openmm.app import *
from openmm import *
from openmm.unit import *
import sys

def prepare_system_from_pdb(pdb_file, forcefield_name="amber14-all.xml",
                              water_model="amber14/tip3pfb.xml"):
    """
    Préparer un système OpenMM à partir d'un fichier PDB.

    Args :
        pdb_file : Chemin vers le fichier PDB nettoyé (utilisez PDBFixer pour les fichiers PDB bruts)
        forcefield_name : Fichier XML du champ de force
        water_model : Fichier XML du modèle d'eau

    Retourne :
        pdb, forcefield, system, topology
    """
    # Charger le PDB
    pdb = PDBFile(pdb_file)

    # Charger le champ de force
    forcefield = ForceField(forcefield_name, water_model)

    # Ajouter les hydrogènes et solvater
    modeller = Modeller(pdb.topology, pdb.positions)
    modeller.addHydrogens(forcefield)

    # Ajouter une boîte de solvant (rembourrage de 10 Å, 150 mM NaCl)
    modeller.addSolvent(
        forcefield,
        model='tip3p',
        padding=10*angstroms,
        ionicStrength=0.15*molar
    )

    print(f"Système : {modeller.topology.getNumAtoms()} atomes, "
          f"{modeller.topology.getNumResidues()} résidus")

    # Créer le système
    system = forcefield.createSystem(
        modeller.topology,
        nonbondedMethod=PME,         # Particle Mesh Ewald pour l'électrostatique à longue portée
        nonbondedCutoff=1.0*nanometer,
        constraints=HBonds,           # Contraindre les liaisons hydrogène (permet un pas de 2 fs)
        rigidWater=True,
        ewaldErrorTolerance=0.0005
    )

    return modeller, system

2. Minimisation d'énergie

from openmm.app import *
from openmm import *
from openmm.unit import *

def minimize_energy(modeller, system, output_pdb="minimized.pdb",
                     max_iterations=1000, tolerance=10.0):
    """
    Minimiser l'énergie du système pour éliminer les conflits stériques.

    Args :
        modeller : Objet Modeller avec topologie et positions
        system : Système OpenMM
        output_pdb : Chemin pour enregistrer la structure minimisée
        max_iterations : Nombre maximal d'étapes de minimisation
        tolerance : Critère de convergence en kJ/mol/nm

    Retourne :
        objet simulation avec positions minimisées
    """
    # Configurer l'intégrateur (n'a pas d'importance pour la minimisation)
    integrator = LangevinMiddleIntegrator(300*kelvin, 1/picosecond, 0.004*picoseconds)

    # Créer la simulation
    # Utiliser le GPU si disponible (CUDA ou OpenCL), sinon CPU
    try:
        platform = Platform.getPlatformByName('CUDA')
        properties = {'DeviceIndex': '0', 'Precision': 'mixed'}
    except Exception:
        try:
            platform = Platform.getPlatformByName('OpenCL')
            properties = {}
        except Exception:
            platform = Platform.getPlatformByName('CPU')
            properties = {}

    simulation = Simulation(
        modeller.topology, system, integrator,
        platform, properties
    )
    simulation.context.setPositions(modeller.positions)

    # Vérifier l'énergie initiale
    state = simulation.context.getState(getEnergy=True)
    print(f"Énergie initiale : {state.getPotentialEnergy()}")

    # Minimiser
    simulation.minimizeEnergy(
        tolerance=tolerance*kilojoules_per_mole/nanometer,
        maxIterations=max_iterations
    )

    state = simulation.context.getState(getEnergy=True, getPositions=True)
    print(f"Énergie minimisée : {state.getPotentialEnergy()}")

    # Enregistrer la structure minimisée
    with open(output_pdb, 'w') as f:
        PDBFile.writeFile(simulation.topology, state.getPositions(), f)

    return simulation

3. Équilibration NVT

from openmm.app import *
from openmm import *
from openmm.unit import *

def run_nvt_equilibration(simulation, n_steps=50000, temperature=300,
                            report_interval=1000, output_prefix="nvt"):
    """
    Équilibration NVT : N, V, T constants.
    Équilibrer les vitesses à la température cible.

    Args :
        simulation : Simulation OpenMM (après minimisation)
        n_steps : Nombre d'étapes MD (50000 × 2 fs = 100 ps)
        temperature : Température en Kelvin
        report_interval : Pas entre les rapports de données
        output_prefix : Préfixe de fichier pour la trajectoire et le journal
    """
    # Ajouter des contraintes de position pour le squelette pendant NVT
    # (Optionnel : contraindre les atomes lourds)

    # Définir la température
    simulation.context.setVelocitiesToTemperature(temperature*kelvin)

    # Ajouter des rapporteurs
    simulation.reporters = []

    # Fichier journal
    simulation.reporters.append(
        StateDataReporter(
            f"{output_prefix}_log.txt",
            report_interval,
            step=True,
            potentialEnergy=True,
            kineticEnergy=True,
            temperature=True,
            volume=True,
            speed=True
        )
    )

    # Trajectoire DCD (format binaire compact)
    simulation.reporters.append(
        DCDReporter(f"{output_prefix}_traj.dcd", report_interval)
    )

    print(f"Exécution de l'équilibration NVT : {n_steps} étapes ({n_steps*2/1000:.1f} ps)")
    simulation.step(n_steps)
    print("Équilibration NVT terminée")

    return simulation

4. Équilibration et Production NPT

def run_npt_production(simulation, n_steps=500000, temperature=300, pressure=1.0,
                        report_interval=5000, output_prefix="npt"):
    """
    Simulation de production NPT : N, P, T constants.

    Args :
        n_steps : Étapes de production (500000 × 2 fs = 1 ns)
        temperature : Température en Kelvin
        pressure : Pression en bar
        report_interval : Pas entre les rapports
    """
    # Ajouter un barostat Monte-Carlo pour le contrôle de la pression
    system = simulation.context.getSystem()
    system.addForce(MonteCarloBarostat(pressure*bar, temperature*kelvin, 25))
    simulation.context.reinitialize(preserveState=True)

    # Mettre à jour les rapporteurs
    simulation.reporters = []
    simulation.reporters.append(
        StateDataReporter(
            f"{output_prefix}_log.txt",
            report_interval,
            step=True,
            potentialEnergy=True,
            temperature=True,
            density=True,
            speed=True
        )
    )
    simulation.reporters.append(
        DCDReporter(f"{output_prefix}_traj.dcd", report_interval)
    )

    # Enregistrer des points de contrôle
    simulation.reporters.append(
        CheckpointReporter(f"{output_prefix}_checkpoint.chk", 50000)
    )

    print(f"Exécution de la production NPT : {n_steps} étapes ({n_steps*2/1000000:.2f} ns)")
    simulation.step(n_steps)
    print("Production DM terminée")
    return simulation

Analyse de trajectoire avec MDAnalysis

1. Charger la trajectoire

import MDAnalysis as mda
from MDAnalysis.analysis import rms, align, contacts
import numpy as np
import matplotlib.pyplot as plt

def load_trajectory(topology_file, trajectory_file):
    """
    Charger une trajectoire DM avec MDAnalysis.

    Args :
        topology_file : Fichier PDB, PSF ou autre fichier de topologie
        trajectory_file : Trajectoire DCD, XTC, TRR ou autre
    """
    u = mda.Universe(topology_file, trajectory_file)
    print(f"Univers : {u.atoms.n_atoms} atomes, {u.trajectory.n_frames} images")
    print(f"Plage de temps : 0 à {u.trajectory.totaltime:.0f} ps")
    return u

2. Analyse RMSD

def compute_rmsd(u, selection="backbone", reference_frame=0):
    """
    Calculer le RMSD des atomes sélectionnés par rapport à l'image de référence.

    Args :
        u : Univers MDAnalysis
        selection : Chaîne de sélection d'atomes (syntaxe MDAnalysis)
        reference_frame : Index de l'image pour la structure de référence

    Retourne :
        Tableau numpy de valeurs (temps, rmsd)
    """
    # Aligner la trajectoire pour minimiser le RMSD
    aligner = align.AlignTraj(u, u, select=selection, in_memory=True)
    aligner.run()

    # Calculer le RMSD
    R = rms.RMSD(u, select=selection, ref_frame=reference_frame)
    R.run()

    rmsd_data = R.results.rmsd  # colonnes : image, temps, RMSD
    return rmsd_data

def plot_rmsd(rmsd_data, title="RMSD au fil du temps", output_file="rmsd.png"):
    """Tracer le RMSD au fil du temps de simulation."""
    fig, ax = plt.subplots(figsize=(10, 4))
    ax.plot(rmsd_data[:, 1] / 1000, rmsd_data[:, 2], 'b-', linewidth=0.5)
    ax.set_xlabel("Temps (ns)")
    ax.set_ylabel("RMSD (Å)")
    ax.set_title(title)
    ax.axhline(rmsd_data[:, 2].mean(), color='r', linestyle='--',
               label=f'Moyenne : {rmsd_data[:, 2].mean():.2f} Å')
    ax.legend()
    plt.tight_layout()
    plt.savefig(output_file, dpi=150)
    return fig

3. Analyse RMSF (Flexibilité par résidu)

def compute_rmsf(u, selection="backbone", start_frame=0):
    """
    Calculer le RMSF par résidu (flexibilité).

    Retourne :
        Tableaux resids, rmsf_values
    """
    # Sélectionner les atomes
    atoms = u.select_atoms(selection)

    # Calculer le RMSF
    R = rms.RMSF(atoms)
    R.run(start=start_frame)

    # Moyenne par résidu
    resids = []
    rmsf_per_res = []
    for res in u.select_atoms(selection).residues:
        res_atoms = res.atoms.intersection(atoms)
        if len(res_atoms) > 0:
            resids.append(res.resid)
            rmsf_per_res.append(R.results.rmsf[res_atoms.indices].mean())

    return np.array(resids), np.array(rmsf_per_res)

4. Contacts Protéine-Ligand

def analyze_contacts(u, protein_sel="protein", ligand_sel="resname LIG",
                      radius=4.5, start_frame=0):
    """
    Suivre les contacts protéine-ligand au fil de la trajectoire.

    Args :
        radius : Distance de contact seuil en Angströms
    """
    protein = u.select_atoms(protein_sel)
    ligand = u.select_atoms(ligand_sel)

    contact_frames = []
    for ts in u.trajectory[start_frame:]:
        # Trouver les atomes de la protéine dans le rayon du ligand
        distances = contacts.contact_matrix(
            protein.positions, ligand.positions, radius
        )
        contact_residues = set()
        for i in range(distances.shape[0]):
            if distances[i].any():
                contact_residues.add(protein.atoms[i].resid)
        contact_frames.append(contact_residues)

    return contact_frames

Guide de sélection du champ de force

SystèmeChamp de force recommandéModèle d'eau
Protéines standardAMBER14 (amber14-all.xml)TIP3P-FB
Protéines + petites moléculesAMBER14 + GAFF2TIP3P-FB
Protéines membranairesCHARMM36mTIP3P
Acides nucléiquesAMBER99-bsc1 ou AMBER14TIP3P
Protéines désordonnéesff19SB ou CHARMM36mTIP3P

Outils de préparation du système

PDBFixer (pour fichiers PDB bruts)

from pdbfixer import PDBFixer
from openmm.app import PDBFile

def fix_pdb(input_pdb, output_pdb, ph=7.0):
    """Corriger les problèmes courants de PDB : résidus manquants, atomes, ajout H, normalisation."""
    fixer = PDBFixer(filename=input_pdb)
    fixer.findMissingResidues()
    fixer.findNonstandardResidues()
    fixer.replaceNonstandardResidues()
    fixer.removeHeterogens(True)    # Supprimer eau/ligands
    fixer.findMissingAtoms()
    fixer.addMissingAtoms()
    fixer.addMissingHydrogens(ph)

    with open(output_pdb, 'w') as f:
        PDBFile.writeFile(fixer.topology, fixer.positions, f)

    return output_pdb

GAFF2 pour petites molécules (via OpenFF Toolkit)

# Pour la paramétrisation des ligands, utilisez OpenFF toolkit ou ACPYPE
# uv pip install openff-toolkit
from openff.toolkit import Molecule, ForceField as OFFForceField
from openff.interchange import Interchange

def parameterize_ligand(smiles, ff_name="openff-2.0.0.offxml"):
    """Générer des paramètres GAFF2/OpenFF pour une petite molécule."""
    mol = Molecule.from_smiles(smiles)
    mol.generate_conformers(n_conformers=1)

    off_ff = OFFForceField(ff_name)
    interchange = off_ff.create_interchange(mol.to_topology())
    return interchange

Bonnes pratiques

  • Toujours minimiser avant MD : Les structures PDB brutes présentent des conflits stériques
  • Équilibrer avant la production : NVT (50–100 ps) → NPT (100–500 ps) → Production
  • Utiliser le GPU : Les simulations sont 10–100× plus rapides sur GPU (CUDA/OpenCL)
  • Pas de 2 fs avec contraintes HBonds : Standard ; utilisez 4 fs avec HMR (redistribution de masse des hydrogènes)
  • Analyser uniquement la trajectoire équilibrée : Éliminez les premiers 20–50 % comme équilibration
  • Enregistrer des points de contrôle : Les runs MD peuvent échouer ; les points de contrôle permettent le redémarrage
  • Conditions aux limites périodiques : Requises pour les systèmes solvatés
  • PME pour l'électrostatique : Plus précis que les méthodes de coupure pour les systèmes chargés

Ressources supplémentaires

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

adaptyv

How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

aeon

This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

alphagenome

Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

arbor

Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

arboreto

Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

astropy

Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

autoskill

Observe the user

benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

biopython

Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

bioservices

Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

bulk-rnaseq

End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

cellxgene-census

Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

cirq

Google quantum computing framework. Use when targeting Google Quantum AI hardware, designing noise-aware circuits, or running quantum characterization experiments. Best for Google hardware, noise modeling, and low-level circuit design. For IBM hardware use qiskit; for quantum ML with autodiff use pennylane; for physics simulations use qutip.

citation-management

Comprehensive citation management for academic research. Search OpenAlex, PubMed, and Google Scholar for papers, extract accurate metadata, validate citations, and generate properly formatted BibTeX entries. This skill should be used when you need to find papers, verify citation information, convert DOIs to BibTeX, or ensure reference accuracy in scientific writing.

clinical-decision-support

Prepare and validate research-only clinical decision-support evaluation, evidence-profile, cohort, survival, biomarker/model, privacy, and governance artifacts. Use for aggregate or synthetic research documentation and traceability—not patient care or live clinical operation.

clinical-reports

Create safety-bounded draft structures and run local deterministic checks for clinical case, diagnostic, trial, safety, and aggregate research reports. Use only with synthetic, de-identified, or aggregate inputs and verified source-fact manifests; every output requires qualified review.

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