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polars-bio

Operaciones genómicas de alto rendimiento sobre intervalos y E/S de archivos bioinformáticos en DataFrames de Polars. Superposición, vecino, fusión, cobertura, complemento y sustracción para intervalos BED/VCF/BAM/GFF. Transmisión, nativo en la nube, alternativa más rápida a bioframe.

¿Qué es polars-bio?

polars-bio es una biblioteca Python de alto rendimiento para operaciones con intervalos genómicos y E/S de archivos bioinformáticos, construida sobre Polars, Apache Arrow y Apache DataFusion. Proporciona una API familiar centrada en DataFrames para realizar operaciones como superposición (overlap), vecino más cercano (nearest), fusión (merge), cobertura (coverage), complemento (complement) y sustracción (subtract), además de leer y escribir formatos comunes como BED, VCF, BAM, CRAM, GFF/GTF, FASTA y FASTQ. Es especialmente útil para procesar grandes conjuntos de datos genómicos que no caben en memoria gracias a su modo de transmisión (streaming) fuera de núcleo, siendo de 6 a 38 veces más rápido que bioframe en benchmarks reales. Soporta dos estilos de API: funcional (`pb.overlap(df1, df2)`) y encadenamiento de métodos (`df1.lazy().pb.overlap(df2)`), además de una interfaz SQL a través de DataFusion. Funciona con almacenamiento en la nube (S3, GCS, Azure) y ofrece lectura perezosa (lazy scanning) con pushdown de predicados para optimizar el rendimiento. Esta habilidad es ideal para desarrolladores y bioinformáticos que necesiten análisis rápidos y escalables de intervalos genómicos, migrar desde bioframe o integrar datos genómicos en pipelines de Polars.

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Documentación

¿Qué hace polars-bio?

Resumen

polars-bio es una biblioteca Python de alto rendimiento para operaciones con intervalos genómicos y E/S de archivos bioinformáticos, construida sobre Polars, Apache Arrow y Apache DataFusion. Proporciona una API familiar centrada en DataFrames para aritmética de intervalos (superposición, vecino más cercano, fusión, cobertura, complemento, sustracción) y lectura/escritura de formatos bioinformáticos comunes (BED, VCF, BAM, CRAM, GFF/GTF, FASTA, FASTQ).

Propuestas de valor clave:

  • 6-38 veces más rápido que bioframe en benchmarks genómicos reales
  • Soporte de transmisión/fuera de núcleo para genomas grandes mediante DataFusion
  • E/S nativa en la nube (S3, GCS, Azure) con pushdown de predicados
  • Dos estilos de API: funcional (pb.overlap(df1, df2)) y encadenamiento de métodos (df1.lazy().pb.overlap(df2))
  • Interfaz SQL para datos genómicos mediante el motor SQL de DataFusion

Cuándo Usar Esta Habilidad

Usa esta habilidad cuando:

  • Realices operaciones con intervalos genómicos (superposición, vecino más cercano, fusión, cobertura, complemento, sustracción)
  • Leas/escribas formatos de archivos bioinformáticos (BED, VCF, BAM, CRAM, GFF/GTF, FASTA, FASTQ)
  • Proceses grandes conjuntos de datos genómicos que no caben en memoria (modo de transmisión)
  • Ejecutes consultas SQL sobre archivos de datos genómicos
  • Migres desde bioframe a una alternativa más rápida
  • Calcules profundidad de lectura/cobertura (pileup) a partir de archivos BAM/CRAM
  • Trabajes con DataFrames de Polars que contengan intervalos genómicos

Inicio Rápido

Instalación

Requiere Python 3.11–3.14 (ver PyPI).

uv pip install "polars-bio==0.31.0"

Para compatibilidad con pandas (pandas ≥3.0):

uv pip install "polars-bio[pandas]==0.31.0"

Ejemplo Básico de Superposición

import polars as pl
import polars_bio as pb

# Crear dos DataFrames de intervalos
df1 = pl.DataFrame({
    "chrom": ["chr1", "chr1", "chr1"],
    "start": [1, 5, 22],
    "end":   [6, 9, 30],
})

df2 = pl.DataFrame({
    "chrom": ["chr1", "chr1"],
    "start": [3, 25],
    "end":   [8, 28],
})

# API funcional (devuelve LazyFrame por defecto)
result = pb.overlap(df1, df2)
result_df = result.collect()

# Obtener un DataFrame directamente
result_df = pb.overlap(df1, df2, output_type="polars.DataFrame")

# API de encadenamiento de métodos (a través del accessor .pb en LazyFrame)
result = df1.lazy().pb.overlap(df2)
result_df = result.collect()

Leyendo un Archivo BED

import polars_bio as pb

# Lectura eager (carga todo el archivo)
df = pb.read_bed("regions.bed")

# Escaneo lazy (transmisión, para archivos grandes)
lf = pb.scan_bed("regions.bed")
result = lf.collect()

Capacidades Principales

1. Operaciones con Intervalos Genómicos

polars-bio proporciona 8 operaciones principales con intervalos para aritmética de rangos genómicos. Todas las operaciones aceptan DataFrames de Polars con columnas chrom, start, end (configurables). Todas las operaciones devuelven un LazyFrame por defecto (usa output_type="polars.DataFrame" para resultados eager).

Operaciones:

  • overlap / count_overlaps - Encontrar o contar intervalos superpuestos entre dos conjuntos (overlap_output="left" devuelve solo aciertos de df1 desde 0.30.0)
  • nearest - Encontrar intervalos más cercanos (con parámetros configurables k, overlap, distance)
  • merge - Fusionar intervalos superpuestos/contiguos dentro de un conjunto
  • cluster - Asignar IDs de clúster a intervalos superpuestos
  • coverage - Calcular recuentos de cobertura por intervalo (operación de dos entradas)
  • complement - Encontrar huecos entre intervalos dentro de un genoma
  • subtract - Eliminar partes de intervalos que se superponen con otro conjunto

Ejemplo:

import polars_bio as pb

# Encontrar intervalos superpuestos (devuelve LazyFrame)
result = pb.overlap(df1, df2, suffixes=("_1", "_2"))

# Contar superposiciones por intervalo
counts = pb.count_overlaps(df1, df2)

# Fusionar intervalos superpuestos
merged = pb.merge(df1)

# Encontrar intervalos más cercanos
nearest = pb.nearest(df1, df2)

# Recolectar cualquier resultado LazyFrame a DataFrame
result_df = result.collect()

Referencia: Consulta references/interval_operations.md para documentación detallada de todas las operaciones, parámetros, esquemas de salida y consideraciones de rendimiento.

2. E/S de Archivos Bioinformáticos

Lee y escribe formatos bioinformáticos comunes con funciones read_*, scan_*, write_* y sink_*. Soporta almacenamiento en la nube (S3, GCS, Azure) y compresión (GZIP, BGZF).

Formatos soportados:

  • BED - Intervalos genómicos (read_bed, scan_bed, write_* vía genérica)
  • VCF - Variantes genéticas (read_vcf, scan_vcf, write_vcf, sink_vcf)
  • VCF Zarr - Almacenes Zarr listos para análisis (read_vcf_zarr, scan_vcf_zarr; rutas de directorio local)
  • BAM - Lecturas alineadas (read_bam, scan_bam, write_bam, sink_bam)
  • CRAM - Alineamientos comprimidos (read_cram, scan_cram, write_cram, sink_cram)
  • GFF - Anotaciones génicas (read_gff, scan_gff)
  • GTF - Anotaciones génicas (read_gtf, scan_gtf)
  • FASTA - Secuencias de referencia (read_fasta, scan_fasta, write_fasta, sink_fasta)
  • FASTQ - Lecturas de secuenciación (read_fastq, scan_fastq, write_fastq, sink_fastq)
  • SAM - Alineamientos de texto (read_sam, scan_sam, write_sam, sink_sam)
  • Pares Hi-C - Contactos de cromatina (read_pairs, scan_pairs)

Ejemplo:

import polars_bio as pb

# Leer archivo VCF
variants = pb.read_vcf("samples.vcf.gz")

# Escaneo lazy de archivo BAM (transmisión)
alignments = pb.scan_bam("aligned.bam")

# Leer anotaciones GFF
genes = pb.read_gff("annotations.gff3")

# Almacenamiento en la nube (parámetros individuales, no un diccionario)
df = pb.read_bed("s3://bucket/regions.bed",
                 allow_anonymous=True)

Referencia: Consulta references/file_io.md para esquemas de columnas por formato, parámetros, opciones de almacenamiento en la nube y soporte de compresión.

3. Procesamiento de Datos SQL

Registra archivos bioinformáticos como tablas y consúltalos usando SQL de DataFusion. Combina el poder de SQL con los lectores conscientes de genómica de polars-bio.

import polars as pl
import polars_bio as pb

# Registrar archivos como tablas SQL (ruta primero, nombre= palabra clave)
pb.register_vcf("samples.vcf.gz", name="variants")
pb.register_bed("target_regions.bed", name="regions")

# Consultar con SQL (devuelve LazyFrame)
result = pb.sql("SELECT chrom, start, end, ref, alt FROM variants WHERE qual > 30")
result_df = result.collect()

# Registrar un DataFrame de Polars como tabla SQL
pb.from_polars("my_intervals", df)
result = pb.sql("SELECT * FROM my_intervals WHERE chrom = 'chr1'").collect()

Referencia: Consulta references/sql_processing.md para funciones de registro, sintaxis SQL y ejemplos.

4. Operaciones de Pileup (Cobertura por Base)

Calcula la profundidad de lectura por base a partir de archivos BAM/CRAM con cálculo de profundidad consciente de CIGAR.

import polars_bio as pb

# Calcular profundidad en un archivo BAM
depth_lf = pb.depth("aligned.bam")
depth_df = depth_lf.collect()

# Con filtro de calidad
depth_lf = pb.depth("aligned.bam", min_mapping_quality=20)

Referencia: Consulta references/pileup_operations.md para parámetros y patrones de integración.

Conceptos Clave

Sistemas de Coordenadas

polars-bio utiliza por defecto coordenadas basadas en 1 (convención genómica). Esto se puede cambiar globalmente:

import polars_bio as pb

# Cambiar a coordenadas semiabiertas basadas en 0 (por defecto es basado en 1 / False)
pb.set_option("datafusion.bio.coordinate_system_zero_based", True)

# Volver a basado en 1 (por defecto)
pb.set_option("datafusion.bio.coordinate_system_zero_based", False)

Las funciones de E/S también aceptan use_zero_based para establecer metadatos de coordenadas en el DataFrame resultante:

# Leer BED con metadatos explícitos basados en 0
df = pb.read_bed("regions.bed", use_zero_based=True)

Importante: Los archivos BED siempre son semiabiertos basados en 0 en el formato de archivo. polars-bio maneja la conversión automáticamente al leer archivos BED. Los metadatos de coordenadas se adjuntan a los DataFrames mediante funciones de E/S y se propagan a través de las operaciones.

Dos Estilos de API

API funcional - funciones independientes, entradas explícitas:

result = pb.overlap(df1, df2, suffixes=("_1", "_2"))
merged = pb.merge(df)

API de encadenamiento de métodos - a través del accessor .pb en LazyFrames (no DataFrames):

result = df1.lazy().pb.overlap(df2)
merged = df.lazy().pb.merge()

Importante: El accessor .pb para operaciones con intervalos solo está disponible en LazyFrame. En DataFrame, .pb solo proporciona operaciones de escritura (write_bam, write_vcf, etc.).

El encadenamiento de métodos permite pipelines fluidos:

# Encadenar operaciones con intervalos (nota: overlap genera columnas con sufijos,
# así que renombrar antes de merge que espera chrom/start/end)
result = (
    df1.lazy()
    .pb.overlap(df2)
    .filter(pl.col("start_2") > 1000)
    .select(
        pl.col("chrom_1").alias("chrom"),
        pl.col("start_1").alias("start"),
        pl.col("end_1").alias("end"),
    )
    .pb.merge()
    .collect()
)

Arquitectura de Sonda-Construcción (Probe-Build)

Para operaciones de dos entradas (overlap, nearest, count_overlaps, coverage), polars-bio utiliza una estrategia de combinación sonda-construcción:

  • El primer DataFrame es la sonda (se itera sobre él)
  • El segundo DataFrame es la construcción (se indexa para búsqueda)

Para mejor rendimiento, pasa el DataFrame más grande como primer argumento (sonda) y el más pequeño como segundo (construcción).

Convenciones de Columnas

Por defecto, polars-bio espera columnas llamadas chrom, start, end. Se pueden especificar nombres de columna personalizados mediante listas:

result = pb.overlap(
    df1, df2,
    cols1=["chromosome", "begin", "finish"],
    cols2=["chr", "pos_start", "pos_end"],
)

Tipos de Retorno y Recolección de Resultados

Todas las operaciones con intervalos y pb.sql() devuelven un LazyFrame por defecto. Usa .collect() para materializar los resultados, o pasa output_type="polars.DataFrame" para evaluación eager:

# Lazy (por defecto) - recolectar cuando sea necesario
result_lf = pb.overlap(df1, df2)
result_df = result_lf.collect()

# Eager - obtener DataFrame directamente
result_df = pb.overlap(df1, df2, output_type="polars.DataFrame")

Transmisión y Procesamiento Fuera de Núcleo

Para conjuntos de datos más grandes que la RAM disponible, usa funciones scan_* y ejecución en transmisión:

# Escanear archivos de forma perezosa
lf = pb.scan_bed("large_intervals.bed")

# Procesar con transmisión de Polars (requiere polars ≥1.37, incluido con polars-bio)
result = lf.collect(engine="streaming")

La transmisión de DataFusion está habilitada por defecto para operaciones con intervalos, procesando datos en lotes sin cargar el conjunto de datos completo en memoria.

Errores Comunes

  1. Accessor .pb en DataFrame vs LazyFrame: Las operaciones con intervalos (overlap, merge, etc.) solo están en LazyFrame.pb. DataFrame.pb solo tiene métodos de escritura. Usa .lazy() para convertir antes de encadenar operaciones con intervalos.

  2. Retornos de LazyFrame: Todas las operaciones con intervalos y pb.sql() devuelven LazyFrame por defecto. No olvides .collect() o usa output_type="polars.DataFrame".

  3. Desajustes de nombres de columna: polars-bio espera chrom, start, end por defecto. Usa los parámetros cols1/cols2 (como listas) si tus columnas tienen nombres diferentes.

  4. Metadatos del sistema de coordenadas: Las operaciones con intervalos leen metadatos de coordenadas de funciones de E/S o del config_meta del DataFrame. Para DataFrames construidos manualmente, establece df.config_meta.set(coordinate_system_zero_based=True) (basado en 0) o False (basado en 1). Si faltan metadatos, polars-bio recurre a la configuración global datafusion.bio.coordinate_system_zero_based (con una advertencia). Establece pb.set_option("datafusion.bio.coordinate_system_check", True) para lanzar MissingCoordinateSystemError en su lugar. Sistemas no coincidentes entre entradas lanzan CoordinateSystemMismatchError.

  5. El orden de sonda-construcción importa: Para overlap, nearest y coverage, el primer DataFrame se sonda contra el segundo. Intercambiar argumentos cambia qué intervalos aparecen en las columnas de salida izquierda vs derecha, y puede afectar el rendimiento.

  6. Límite de posición INT32: Las posiciones genómicas se almacenan como enteros de 32 bits, limitando las coordenadas a ~2.1 mil millones. Esto es suficiente para todos los genomas conocidos, pero puede ser un problema con espacios de coordenadas personalizados.

  7. Requisitos de índice BAM: read_bam y scan_bam requieren un archivo de índice .bai junto al BAM. Crea uno con samtools index si falta.

  8. Ejecución paralela deshabilitada por defecto: La paralelización de DataFusion por defecto es de 1 partición. Habilita para conjuntos de datos grandes:

    pb.set_option("datafusion.execution.target_partitions", 8)
    
  9. CRAM tiene funciones separadas: Usa read_cram/scan_cram/register_cram para archivos CRAM (no read_bam). Las funciones CRAM requieren un parámetro reference_path.

Mejores Prácticas

  1. Usa scan_* para archivos grandes: Prefiere scan_bed, scan_vcf, etc. sobre read_* para archivos más grandes que la RAM disponible. Las funciones de escaneo habilitan transmisión y pushdown de predicados.

  2. Configura paralelismo para conjuntos de datos grandes:

    import os
    pb.set_option("datafusion.execution.target_partitions", os.cpu_count())
    
  3. Usa compresión BGZF: Los archivos comprimidos con BGZF (.bed.gz, .vcf.gz) soportan descompresión paralela por bloques, significativamente más rápido que GZIP simple.

  4. Selecciona columnas temprano: Cuando solo se necesitan columnas específicas, selecciónalas temprano para reducir el uso de memoria:

    df = pb.read_vcf("large.vcf.gz").select("chrom", "start", "end", "ref", "alt")
    
  5. Usa rutas de nube directamente: Pasa URIs de S3/GCS/Azure directamente a funciones read/scan/register en lugar de descargar archivos primero. El acceso autenticado usa las credenciales de tu SDK de nube (AWS_ACCESS_KEY_ID/AWS_SECRET_ACCESS_KEY, GOOGLE_APPLICATION_CREDENTIALS, valores predeterminados de Azure) solo cuando se accede a esas rutas de nube:

    df = pb.read_bed("s3://my-bucket/regions.bed", allow_anonymous=True)
    
  6. Prefiere API funcional para operaciones individuales, encadenamiento de métodos para pipelines: Usa pb.overlap() para operaciones puntuales y .lazy().pb.overlap() al construir pipelines de múltiples pasos.

Recursos

references/

Documentación detallada para cada capacidad principal:

  • interval_operations.md - Las 8 operaciones con intervalos con parámetros, ejemplos, esquemas de salida y consejos de rendimiento. Referencia principal para aritmética de rangos genómicos.

  • file_io.md - Tabla de formatos soportados, esquemas de columnas por formato,…

[truncado para traducción]

Individual skills in this repo

This repo contains 20 individual skills — each has its own dedicated page.

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How to use the Adaptyv Bio Foundry API and Python SDK for protein experiment design, submission, and results retrieval. Use this skill whenever the user mentions Adaptyv, Foundry API, protein binding assays, protein screening experiments, BLI/SPR assays, thermostability assays, or wants to submit protein sequences for experimental characterization. Also trigger when code imports `adaptyv`, `adaptyv_sdk`, or `FoundryClient`, or references `foundry-api-public.adaptyvbio.com`.

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This skill should be used for time series machine learning tasks including classification, regression, clustering, forecasting, anomaly detection, segmentation, and similarity search. Use when working with temporal data, sequential patterns, or time-indexed observations requiring specialized algorithms beyond standard ML approaches. Particularly suited for univariate and multivariate time series analysis with scikit-learn compatible APIs.

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Look up precomputed AlphaGenome Atlas effects for any GRCh38 single-nucleotide variant (AVI score with Phred and 18 SHAP feature attributions, plus raw and quantile scores for RNA-seq, DNase, ATAC, ChIP-TF, ChIP-histone, CAGE, PRO-cap, splicing, polyadenylation and contact-map tracks), score variants or scan windows on demand with the AlphaGenome model for human and mouse (variant scoring, in silico mutagenesis, REF-versus-ALT track prediction), and build Atlas website deep links. Use when the user mentions AlphaGenome, AlphaGenome Atlas, AVI or AlphaGenome Variant Impact, DeepMind variant effect prediction, or wants to prioritise or mechanistically interpret non-coding, regulatory, splicing, enhancer, promoter, or chromatin-accessibility effects of SNVs from a VCF, credible set, or region. Research use only; not a clinical tool.

analytical-method-validation

Plan, execute, and document validation, verification, and transfer of analytical procedures under the governing framework - ICH Q2(R2) and Q14, USP <1220>/<1225>/<1226>, ICH M10 bioanalytical, CLSI EP, or ISO/IEC 17025. Use for HPLC, LC-MS/MS, GC, CE, ICP-MS, dissolution, qNMR, qPCR, NIR, and ligand binding or cell-based assays whenever the question is whether a procedure is fit for its intended purpose. Triggers include

anndata

Data structure for annotated matrices in single-cell analysis. Use when working with .h5ad files or integrating with the scverse ecosystem. This is the data format skill—for analysis workflows use scanpy; for probabilistic models use scvi-tools; for population-scale queries use cellxgene-census.

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Autonomously improve a real artifact (code, training recipe, agent harness, data pipeline, prompt) against an objective and an evaluator, using Hypothesis Tree Refinement (HTR) from the Arbor paper. Use this whenever someone wants to iteratively optimize something over many experiments without overfitting — e.g.

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Infer gene regulatory networks (GRNs) from gene expression data using scalable algorithms (GRNBoost2, GENIE3). Use when analyzing transcriptomics data (bulk RNA-seq, single-cell RNA-seq) to identify transcription factor-target gene relationships and regulatory interactions. Supports distributed computation for large-scale datasets.

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Core Python library for astronomy and astrophysics workflows that need Astropy APIs, including units/quantities, coordinates, FITS I/O, tables, time systems, WCS, and cosmology. Use when implementing or debugging astronomical data analysis code with Astropy.

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benchling-integration

Benchling Python SDK and REST API integration for registry entities, inventory, ELN entries, workflows, Benchling Apps, and Data Warehouse queries. Use when automating lab data with benchling-sdk or the v2 API.

bgpt-paper-search

Search scientific papers and retrieve structured experimental data extracted from full-text studies via the BGPT MCP server. Returns 25+ fields per paper including methods, results, sample sizes, quality scores, and conclusions. Use for literature reviews, evidence synthesis, and finding experimental details not available in abstracts alone.

bids

>

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Comprehensive molecular biology toolkit. Use for sequence manipulation, file parsing (FASTA/GenBank/PDB), phylogenetics, and programmatic NCBI/PubMed access (Bio.Entrez). Best for batch processing, custom bioinformatics pipelines, BLAST automation. For quick lookups use gget; for multi-service integration use bioservices.

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Unified Python interface to 40+ bioinformatics services. Use when querying multiple databases (UniProt, KEGG, ChEMBL, Reactome) in a single workflow with consistent API. Best for cross-database analysis, ID mapping across services. For quick single-database lookups use gget; for sequence/file manipulation use biopython.

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End-to-end bulk RNA-seq orchestrator — takes raw FASTQ reads through QC and trimming (FastQC, fastp/Trim Galore), alignment and quantification (STAR, Salmon, featureCounts), assembles a gene-level counts matrix, then hands off to differential expression (pydeseq2), pathway/GSEA enrichment (pathway-enrichment), and publication figures (scientific-visualization). Use whenever the user has bulk RNA-seq reads or quant output and wants a complete, reproducible differential-expression workflow — e.g.

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Query the CZ CELLxGENE Census programmatically for versioned public single-cell and spatial transcriptomics data. Use when you need population-scale cell metadata, gene expression slices, Census summary counts, source H5AD URIs/downloads, embeddings, spatial Census data, or reference atlas comparisons across organisms, tissues, diseases, assays, and cell types. For analyzing your own local single-cell data use scanpy, anndata, or scvi-tools.

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